摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-10页 |
第一部分:长期酒精暴露引起小鼠胰岛素抵抗:神经酰胺的可能作用 | 第10-36页 |
1 前言 | 第10-12页 |
2 材料、仪器与方法 | 第12-19页 |
·主要仪器设备 | 第12页 |
·主要试剂 | 第12-13页 |
·主要试剂的配制 | 第13-16页 |
·动物模型及分组 | 第16-17页 |
·动物 | 第16-17页 |
·酒精诱导胰岛素抵抗小鼠模型的建立及分组 | 第17页 |
·空腹血糖值、血清胰岛素浓度测定及 HOMA-IR 计算 | 第17页 |
·免疫组织化学反应 | 第17-18页 |
·WESTERN BLOT 检测海马组织细胞内 IRS2 蛋白的表达量 | 第18页 |
·统计学处理 | 第18-19页 |
3 结果 | 第19-26页 |
·酒精暴露后血糖值、血清胰岛素浓度及胰岛素抵抗指数变化 | 第19页 |
·酒精暴露后不同基因型小鼠海马 IRS2 表达数量变化 | 第19-20页 |
·IRS2 在酒精暴露不同基因型小鼠海马组织的表达量变化 | 第20-26页 |
4 讨论 | 第26-29页 |
·长期酒精暴露可导致胰岛素抵抗的形成 | 第26-27页 |
·神经酰胺参与调节酒精诱导胰岛素抵抗的过程 | 第27-29页 |
5 参考文献 | 第29-32页 |
6 附图及图版说明 | 第32-34页 |
7 结论 | 第34-36页 |
第二部分:长期酒精暴露对 SMS-/-2小鼠肝脑的损伤及其机制的研究 | 第36-62页 |
1 前言 | 第36-38页 |
2 材料、仪器与方法 | 第38-41页 |
·动物模型及分组 | 第38页 |
·H.E.染色和 MASSON 染色 | 第38-39页 |
·免疫组织化学反应 | 第39页 |
·电镜标本的制作 | 第39-40页 |
·WESTERN BLOT 检测海马组织细胞内激活的 NF-KB 和 C-FOS 蛋白的表达量 | 第40页 |
·统计学处理 | 第40-41页 |
3 结果 | 第41-48页 |
·酒精暴露对肝脏的损伤 | 第41页 |
·酒精暴露对不同基因型小鼠海马 CA1 区氧化应激损伤阳性细胞数的变化 | 第41-42页 |
·酒精暴露后氧化应激指标 NF-kB 在海马 CA1 区锥体细胞内的表达 | 第41-42页 |
·酒精暴露后氧化应激指标 c-Fos 在海马 CA1 区锥体细胞内的表达 | 第42页 |
·损伤相关蛋白 NF-ΚB 和 C-FOS 在酒精暴露后不同基因型小鼠海马的表达量 | 第42-48页 |
4 讨论 | 第48-52页 |
·、酒精暴露导致肝脏氧化应激反应与胰岛素抵抗 | 第48-49页 |
·、酒精暴露与小鼠海马 CA1 区氧化应激及炎症反应 | 第49-50页 |
·、神经酰胺在酒精诱导肝脑损伤中的作用 | 第50-52页 |
5 参考文献 | 第52-54页 |
6 附图与图版说明 | 第54-60页 |
7 结论 | 第60-62页 |
文献综述 长期酒精暴露诱导胰岛素抵抗对肝脑轴的影响 | 第62-70页 |
1、酒精、胰岛素抵抗与肝脑轴的关系 | 第62-64页 |
·酒精与胰岛素抵抗 | 第62-63页 |
·酒精暴露与肝脑轴 | 第63-64页 |
·酒精暴露对肝脏的损伤 | 第63页 |
·酒精暴露对 CNS 的损伤 | 第63-64页 |
2、酒精暴露诱导胰岛素抵抗对肝脑轴神经变性的机制 | 第64-67页 |
·胰岛素和胰岛素样生长因子在肝和脑的信号传导 | 第64-65页 |
·酒精暴露诱导胰岛素抵抗的机制 | 第65-66页 |
·酒精通过胰岛素和 IGF-1 信号通路介导肝脏和大脑的胰岛素抵抗 | 第65页 |
·乙醇诱导脑胰岛素/IGF 抵抗与膜脂组成改变有关 | 第65-66页 |
·神经酰胺与胰岛素抵抗 | 第66页 |
·酒精暴露、胰岛素抵抗与肝脑轴 | 第66-67页 |
小结 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-70页 |
缩略语词汇表 | 第70-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第73-74页 |