| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 縮略语表 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-17页 |
| ·低温解除百合鳞茎休眠的研究进展 | 第10-13页 |
| ·低温解除百合鳞茎休眠的形态标志 | 第10-11页 |
| ·低温解除百合鳞茎休眠过程中的生理生化变化研究 | 第11-13页 |
| ·植物休眠的分子生物学研究进展 | 第13-14页 |
| ·抑制性差减杂交技术 | 第14-17页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第17页 |
| 2 材料和方法 | 第17-35页 |
| ·植物材料及处理方法 | 第17页 |
| ·载体及菌种 | 第17-18页 |
| ·主要试剂和药品 | 第18页 |
| ·接头和引物序列 | 第18-19页 |
| ·主要仪器设备 | 第19页 |
| ·百合鳞茎总RNA的提取 | 第19-20页 |
| ·外源RNase的去除 | 第19页 |
| ·RNA的提取 | 第19-20页 |
| ·总RNA中基因组DNA的酶解 | 第20页 |
| ·抑制性差减杂交 | 第20-30页 |
| ·第一链cDNA的合成 | 第21页 |
| ·第二链cDNA的合成 | 第21-23页 |
| ·Rsa I酶切 | 第23页 |
| ·接头连接 | 第23-24页 |
| ·接头连接效率检测 | 第24-26页 |
| ·第一次杂交 | 第26页 |
| ·第二次杂交 | 第26-27页 |
| ·PCR扩增 | 第27-29页 |
| ·差减效率的PCR分析 | 第29-30页 |
| ·应用T/A克隆法构建差减cDNA文库 | 第30-32页 |
| ·连接 | 第30-31页 |
| ·连接产物的转化 | 第31页 |
| ·差减文库的构建 | 第31-32页 |
| ·斑点杂交筛选差减文库 | 第32-34页 |
| ·插入片段的扩增及转膜 | 第32页 |
| ·探针的标记 | 第32-33页 |
| ·杂交与显色 | 第33-34页 |
| ·测序与序列分析 | 第34-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-54页 |
| ·低温解除鳞茎休眠过程中顶芽的形态变化 | 第35页 |
| ·百合鳞茎总RNA提取质量检测 | 第35-36页 |
| ·链cDNA的合成 | 第36-37页 |
| ·酶切效率 | 第37页 |
| ·接头连接效率检测 | 第37-38页 |
| ·PCR产物的分析 | 第38-39页 |
| ·差减效率PCR分析 | 第39页 |
| ·差减文库构建 | 第39-40页 |
| ·斑点杂交筛选阳性克隆 | 第40页 |
| ·测序结果及序列分析 | 第40-50页 |
| ·功能分类 | 第50-54页 |
| ·GO分类结果 | 第50-52页 |
| ·COG分类结果 | 第52-53页 |
| ·KEGG分析 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-62页 |
| ·低温解除百合鳞茎休眠过程中相关基因的探讨 | 第54-59页 |
| ·糖代谢相关的基因 | 第54-55页 |
| ·能量代谢相关基因 | 第55页 |
| ·信号传导相关基因 | 第55-56页 |
| ·转录相关基因 | 第56页 |
| ·Cold-regulated gibberellin-regulated protein | 第56-57页 |
| ·活性氧清除相关基因 | 第57页 |
| ·渗透调节基因 | 第57-58页 |
| ·LEA蛋白 | 第58页 |
| ·F-BOX蛋白 | 第58-59页 |
| ·反库中筛选到的差异表达基因的探讨 | 第59-60页 |
| ·百合鳞茎总RNA的提取 | 第60页 |
| ·取材 | 第60-61页 |
| ·低温解除百合鳞茎休眠的标志 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-72页 |
| 附录 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74页 |