| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 TGP对系统性红斑狼疮患者CD4~+CD25~+T调节细胞及相关细胞因子影响 | 第16-37页 |
| 研究背景 | 第16页 |
| 材料和方法 | 第16-26页 |
| 1. 研究对象 | 第16-17页 |
| 2. 仪器设备与试剂 | 第17-19页 |
| ·主要实验仪器 | 第17-18页 |
| ·主要试剂及耗材 | 第18-19页 |
| ·试剂配制 | 第19页 |
| 3. 实验方法 | 第19-25页 |
| ·免疫磁珠法分离外周血CD4+T细胞 | 第19-20页 |
| ·不同浓度TGP干预 | 第20页 |
| ·流式细胞仪检测 | 第20-21页 |
| ·RNA提取和real-time PCR | 第21-24页 |
| ·酶联免疫吸附法（ELISA) | 第24-25页 |
| 4. 统计学方法 | 第25-26页 |
| 结果 | 第26-34页 |
| 1. TGP刺激诱导SLE患者外周血CD4~+T细胞中CD4~+CD25~+Treg细胞扩增,且呈浓度依赖性 | 第26-29页 |
| 2. 高浓度TGP上调SLE患者外周血CD4~+T细胞中IL-2、IFN-γmRNA水平,而TGF-β1mRNA水平无明显改变 | 第29-33页 |
| 3. 高浓度TGP上调SLE患者外周血CD4~+T细胞中IL-2、IFN-γ蛋白水平,而TGF-β1蛋白水平无明显改变 | 第33-34页 |
| 讨论 | 第34-36页 |
| 小结 | 第36-37页 |
| 第二部分 TGP对系统性红斑狼疮患者CD4+T细胞Foxp3表达的影响及其机制 | 第37-68页 |
| 研究背景 | 第37-38页 |
| 第一节 TGP对SLE患者CD4+T细胞Foxp3的表达的影响 | 第38-50页 |
| 材料和方法 | 第38-46页 |
| 1. 研究对象 | 第38页 |
| 2. 仪器设备与试剂 | 第38-42页 |
| ·主要实验仪器 | 第38-39页 |
| ·主要试剂 | 第39-40页 |
| ·药物和溶液配制 | 第40-42页 |
| 3. 实验方法 | 第42-45页 |
| ·实验样本 | 第42页 |
| ·不同浓度TGP干预2、4、6天 | 第42页 |
| ·RNA提取和real-time PCR | 第42页 |
| ·蛋白提取和Western blotting | 第42-45页 |
| 4. 统计学方法 | 第45-46页 |
| 结果 | 第46-50页 |
| 1. 高浓度TGP上调SLE患者外周血CD4+T细胞中Foxp3 mRNA表达 | 第46-47页 |
| 2. 高浓度TGP上调SLE患者外周血CD4+T细胞中Foxp3 mRNA表达,且小时最明显 | 第47-48页 |
| 3. 高浓度TGP上调SLE患者外周血CD4+T细胞中Foxp3蛋白表达 #36材料和方法 | 第48-50页 |
| 第二节 TGP对SLE患者CD4+T细胞Foxp3基因启动子区域甲基化水平影响 | 第50-65页 |
| 材料和方法 | 第50-61页 |
| 1. 研究对象 | 第50页 |
| 2. 仪器设备与试剂 | 第50-53页 |
| ·主要实验仪器 | 第50-51页 |
| ·主要试剂 | 第51-52页 |
| ·药物和溶液配制 | 第52-53页 |
| 3. 实验方法 | 第53-60页 |
| ·实验标本 | 第53页 |
| ·DNA提取 | 第53-54页 |
| ·亚硫酸氢钠测序 | 第54-60页 |
| 4. 统计学方法 | 第60-61页 |
| 结果 | 第61-65页 |
| 讨论 | 第65-67页 |
| 小结 | 第67-68页 |
| 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-73页 |
| 综述 | 第73-81页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
