摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-13页 |
第一章 绪论 | 第13-18页 |
·研究背景 | 第13页 |
·常规药物体内动力学检测方法 | 第13-14页 |
·实时在位药物体内动力学检测方法 | 第14-15页 |
·实时在位无损药代检测方法 | 第15-16页 |
·研究目标和内容 | 第16-17页 |
·研究目标 | 第16-17页 |
·论文结构 | 第17页 |
·本章小结 | 第17-18页 |
第二章 无损检测系统原理以及系统搭建 | 第18-32页 |
·无损检测系统光学基础 | 第18-23页 |
·荧光产生原理 | 第18-19页 |
·荧光产生的影响因素 | 第19-23页 |
·系统整体设计 | 第23-24页 |
·数据采集系统设计 | 第24-28页 |
·虚拟仪器技术概念 | 第24-25页 |
·程序流程图 | 第25-26页 |
·基于LabVIEW 的数据采集程序 | 第26-28页 |
·光电检测电路 | 第28-30页 |
·光电检测基本原理 | 第28-29页 |
·检测电路及工作原理 | 第29-30页 |
·数据采集 | 第30页 |
·本章小结 | 第30-32页 |
第三章 近红外荧光染料CYPATE 在位无损检测研究 | 第32-42页 |
·动物实验材料与仪器 | 第32-33页 |
·无损检测实验方法 | 第33-34页 |
·动物实验 | 第34-36页 |
·专属性实验 | 第34页 |
·标准曲线的制备实验 | 第34页 |
·精确度实验 | 第34页 |
·大鼠股动脉处的在位无损监测实验 | 第34-35页 |
·静脉注射后初始浓度的测定实验 | 第35页 |
·体外荧光检测的对比实验 | 第35页 |
·近红外成像系统监测CYPATE 在小鼠体内组织分布的实验 | 第35-36页 |
·实验结果与分析 | 第36-38页 |
·专属性 | 第36-37页 |
·标准曲线 | 第37页 |
·精确度 | 第37页 |
·近红外光谱系统监测到的时量曲线 | 第37-38页 |
·结果分析 | 第38-39页 |
·静脉注射后初始浓度的测定 | 第38页 |
·体外荧光检测的对照比较 | 第38-39页 |
·近红外成像系统在位无损监测CYPATE 在小鼠体内的组织分布 | 第39-40页 |
·结论 | 第40-42页 |
第四章 胰岛素荧光标记物合成、生物活性及在位无损检测研究 | 第42-56页 |
·胰岛素荧光标记物的合成 | 第42-43页 |
·研究方法 | 第43-44页 |
·合成原理及方法 | 第43页 |
·标记物吸收曲线测定 | 第43页 |
·Tricine-SDS-PAGE 对标记物的初步检验 | 第43-44页 |
·复合物标记效率的检验方法 | 第44页 |
·结果与分析 | 第44-47页 |
·光学性质 | 第44-45页 |
·Tricine-SDS-PAGE 对标记物的初步检验 | 第45页 |
·对复合物标记效率的考察 | 第45-47页 |
·Insulin-CYPATE 复合物的生物活性考察 | 第47-49页 |
·材料与方法 | 第47-48页 |
·Ⅰ型糖尿病模型小鼠的建立 | 第48页 |
·生物活性测定实验 | 第48-49页 |
·实验结果与分析 | 第49页 |
·Ⅰ型糖尿病模型小鼠的建立 | 第49页 |
·生物活性测定实验 | 第49页 |
·insulin-CYPATE 复合物体内代谢的研究 | 第49-51页 |
·实验材料 | 第49-50页 |
·实验方法 | 第50页 |
·标准曲线的制备 | 第50页 |
·大鼠股动脉处的在位无损监测实验 | 第50-51页 |
·静脉注射后初始浓度的测定 | 第51页 |
·近红外成像系统在位无损监测insulin-CYPATE 复合物在小鼠体内组织分布的实验 | 第51页 |
·实验结果与分析 | 第51-53页 |
·方法的专属性 | 第51-52页 |
·标准曲线的制备 | 第52页 |
·近红外光谱系统监测到的时量曲线 | 第52-53页 |
·数据分析 | 第53-54页 |
·静脉注射后初始浓度的测定 | 第53页 |
·近红外成像系统在位无损监测insulin-CYPATE 复合物在小鼠体内的组织分布 | 第53-54页 |
·讨论 | 第54-56页 |
第五章 总结与展望 | 第56-58页 |
·全文总结 | 第56页 |
·本文创新点 | 第56页 |
·无损药代动力学检测系统展望 | 第56-57页 |
·结束语 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
在学期间的研究成果及发表的学术论文 | 第62页 |