摘要 | 第1-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
第1章 文献综述 | 第13-37页 |
·花的诱导 | 第13-18页 |
·花序分生组织和花分生组织的发育 | 第18-24页 |
·花器官的发育 | 第24-35页 |
·前景展望 | 第35-37页 |
第2章 LHS1-3基因的图位克隆和功能分析 | 第37-55页 |
前言 | 第37页 |
·材料与方法 | 第37-42页 |
·材料 | 第37-38页 |
·形态和组织学分析 | 第38页 |
·水稻DNA的分离 | 第38-39页 |
·水稻总RNA的分离和纯化 | 第39-40页 |
·mRNA的反转录 | 第40页 |
·基因定位 | 第40-41页 |
·OsMADS1基因的克隆与序列分析 | 第41页 |
·OsMADS1基因的半定量RT-PCR | 第41-42页 |
·生物信息学分析 | 第42页 |
·结果分析 | 第42-49页 |
·lhs1-3突变体的形态和组织学分析 | 第42-43页 |
·lhs1-3突变体的遗传分析 | 第43页 |
·LHS1-3基因的精细定位和鉴定 | 第43-48页 |
·OsMADS1禾本科直系同源基因的分子进化分析 | 第48-49页 |
·讨论 | 第49-55页 |
·lhs1-3引起小穗确定性丢失,是OsMADS1基因的等位突变 | 第49-51页 |
·LHS1类基因在禾本科小穗确定性发育中的角色 | 第51-52页 |
·OsMADS1在花分生组织确定性调控中的角色 | 第52页 |
·OsMADS1基因在花器官发育中的角色 | 第52-53页 |
·OsMADS1在外稃和内稃的细胞分化和增殖中充当不同的角色 | 第53-54页 |
·OsMADS1基因不同的突变位点导致不一样的突变表现 | 第54页 |
·lhs1-3突变的产生 | 第54-55页 |
第3章 PS基因的图位克隆和功能分析 | 第55-86页 |
前言 | 第55页 |
·材料与方法 | 第55-66页 |
·材料 | 第55-56页 |
·形态和组织学分析 | 第56页 |
·DNA、RNA的分离和纯化及mRNA的反转录方法同前2.1.3、2.1.4和2.1.5 | 第56页 |
·PS基因的DNA和mRNA序列的鉴定 | 第56-57页 |
·mRNA原位杂交 | 第57-60页 |
·启动子表达载体PSP::GUS的设计与构建 | 第60页 |
·RNA干涉载体的设计与构建 | 第60-62页 |
·PS异位表达载体的设计与构建 | 第62-63页 |
·农杆菌介导法转化水稻 | 第63-64页 |
·生物信息学分析 | 第64-65页 |
·PS基因的半定量RT-PCR分析 | 第65页 |
·定量RT-PCR(QPCR)分析 | 第65-66页 |
·结果与分析 | 第66-83页 |
·突变体的形态和组织学分析 | 第66-71页 |
·育性分析 | 第71页 |
·遗传分析 | 第71-72页 |
·PS基因的图位克隆和分子鉴定 | 第72-75页 |
·PS基因的表达模式分析 | 第75-78页 |
·PS基因的RNA干涉分析 | 第78-81页 |
·PS的异位表达分析 | 第81页 |
·PS调控其他花器官特征基因 | 第81-83页 |
·结论与讨论 | 第83-86页 |
·PS基因调控雄蕊的特征发育 | 第83页 |
·PS调控花器官的形态发育 | 第83-84页 |
·PS因功能的保守与分化 | 第84-85页 |
·PS基因的RNAi效率 | 第85-86页 |
附件 | 第86-89页 |
参考文献 | 第89-98页 |
致谢 | 第98-99页 |
附录A 发表及待发表论文 | 第99-100页 |
附录B 参加科研项目 | 第100页 |
附录C 科研成果 | 第100页 |