| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-15页 |
| 缩略语表 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-22页 |
| 1.本课题研究背景 | 第17-19页 |
| 2.本论文研究的目的和意义 | 第19页 |
| 3.本论文研究内容 | 第19-20页 |
| 参考文献 | 第20-22页 |
| 第一章 HOGS的制备及分离纯化 | 第22-35页 |
| 1 前言 | 第22-23页 |
| 2.材料与方法 | 第23-26页 |
| ·材料 | 第23-24页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·主要仪器 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-26页 |
| ·HOGS的制备 | 第24页 |
| ·HOGS的纯化 | 第24-25页 |
| ·HOGS糖酯含量的测定 | 第25页 |
| ·HOGS硫酸基含量的测定 | 第25页 |
| ·HOGS纯度的鉴定 | 第25-26页 |
| ·数据统计与处理 | 第26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-32页 |
| ·离子交换层析纯化结果 | 第26-27页 |
| ·HOGS糖酯和硫酸基含量测定结果 | 第27-28页 |
| ·葡萄糖标准曲线 | 第27-28页 |
| ·硫酸基标准曲线 | 第28页 |
| ·HOGS纯度鉴定 | 第28-32页 |
| ·凝胶层析鉴定结果 | 第28-30页 |
| ·醋酸纤维素薄膜电泳鉴定结果 | 第30-31页 |
| ·高效液相色谱鉴定结果 | 第31-32页 |
| 4 讨论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-35页 |
| 第二章 HOGS的结构表征 | 第35-50页 |
| 1 前言 | 第35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-37页 |
| ·材料 | 第35-36页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·主要仪器 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-37页 |
| ·气相色谱(GC)分析HOGS单糖组成 | 第36页 |
| ·凝胶渗透色谱(GPC)测定HOGS分子量 | 第36页 |
| ·傅立叶红外光谱(FT-IR)分析 | 第36页 |
| ·激光拉曼光谱(RS)分析 | 第36页 |
| ·X衍射光电子能谱(XPS)分析 | 第36-37页 |
| ·氢核磁共振波谱(~1H-NMR)分析 | 第37页 |
| 3.结果与分析 | 第37-47页 |
| ·HOGS单糖组成 | 第37-38页 |
| ·HOGS分子量及分布 | 第38-39页 |
| ·红外光谱分析结果 | 第39-40页 |
| ·激光拉曼光谱分析结果 | 第40-42页 |
| ·X射线光电子能谱分析结果 | 第42-46页 |
| ·氢核磁共振波谱(~1H-NMR)分析结果 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 第三章 HOGS对RNA病毒CVB_3侵染及PV_1复制的抑制作用研究 | 第50-72页 |
| 1 前言 | 第50-53页 |
| 2 材料与方法 | 第53-56页 |
| ·材料 | 第53页 |
| ·实验材料 | 第53页 |
| ·主要试剂 | 第53页 |
| ·主要仪器 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-56页 |
| ·HOGS的Hela、Vero细胞毒性测定 | 第53-54页 |
| ·HOGS对CVB_3、PV_1病毒滴度的影响 | 第54页 |
| ·HOGS抗CVB_3作用方式 | 第54-55页 |
| ·HOGS抗PV_1作用方式 | 第55页 |
| ·HOGS抗PV_1最小有效浓度 | 第55页 |
| ·评价方法 | 第55-56页 |
| ·数据统计与处理 | 第56页 |
| 3 结果与分析 | 第56-68页 |
| ·HOGS的Hela、Vero细胞毒性结果 | 第56-60页 |
| ·HOGS与CBV_3、PV_1中和病毒滴度的测定结果 | 第60-61页 |
| ·HOGS抗CVB_3作用方式研究结果 | 第61-65页 |
| ·HOGS抗PV_1作用方式研究结果 | 第65-67页 |
| ·HOGS抗PV_1最小有效浓度 | 第67-68页 |
| 4 讨论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-72页 |
| 第四章 HOGS对DNA病毒HBV胞内表达的抑制作用研究 | 第72-87页 |
| 1 前言 | 第72-73页 |
| 2 材料与方法 | 第73-76页 |
| ·材料 | 第73-74页 |
| ·实验材料 | 第73-74页 |
| ·主要试剂 | 第74页 |
| ·主要仪器 | 第74页 |
| ·实验方法 | 第74-76页 |
| ·HOGS的HepG_2-2.2.15细胞毒性测定 | 第74-75页 |
| ·ELISA法检测HBsAR、HBeAg含量 | 第75页 |
| ·荧光探针定量PCR检测HBV-DNA的含量 | 第75-76页 |
| ·评价方法 | 第76页 |
| ·实验数据统计与处理 | 第76页 |
| 3.结果与分析 | 第76-84页 |
| ·HOGS的HepG_2-2.2.15细胞毒性结果 | 第76-78页 |
| ·HOGS对HBV病毒HBsAg、HBeAg表达的影响 | 第78-81页 |
| ·HOGS对HBV-DNA复制的影响 | 第81-84页 |
| 4.讨论 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-87页 |
| 第五章 HOGS抗RNA病毒IAV的血凝效价及作用机理研究 | 第87-107页 |
| 1 前言 | 第87-89页 |
| 2.材料与方法 | 第89-93页 |
| ·材料 | 第89-90页 |
| ·实验材料 | 第89页 |
| ·主要试剂 | 第89-90页 |
| ·主要仪器 | 第90页 |
| ·实验方法 | 第90-93页 |
| ·HOGS的MDCK细胞毒性测定 | 第90页 |
| ·IAV病毒滴度的测定 | 第90页 |
| ·HOGS抑制IAV血凝效价试验 | 第90-91页 |
| ·HOGS抑制IAV神经氨酸酶活性 | 第91-92页 |
| ·荧光RT-PCR定量检测IAV-RNA | 第92-93页 |
| ·实验数据统计与处理 | 第93页 |
| 3 结果与分析 | 第93-104页 |
| ·HOGS的MDCK细胞毒性结果 | 第93-94页 |
| ·病毒滴度测定结果 | 第94-95页 |
| ·HOGS体外分组抑制病毒血凝效价结果 | 第95-98页 |
| ·HOGS抗IAV最小有效浓度结果 | 第98-99页 |
| ·HOGS抗甲型流感病毒作用机理研究结果 | 第99-104页 |
| ·HOGS抑制病毒神经氨酸酶(NA)活性结果 | 第99-101页 |
| ·HOGS对IAV-RNA复制的抑制结果 | 第101-104页 |
| 4 讨论 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-107页 |
| 第六章 结论与展望 | 第107-112页 |
| 1 结论 | 第107-110页 |
| 2.创新点 | 第110-111页 |
| 3.展望 | 第111-112页 |
| 文献综述 | 第112-132页 |
| 参考文献 | 第128-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 附录 | 第133页 |
