摘要 | 第1-3页 |
Abstract | 第3-4页 |
中文文摘 | 第4-8页 |
第1章 绪论 | 第8-20页 |
·蛋白质组学研究方法 | 第9-14页 |
·蛋白质组与蛋白质组学 | 第9页 |
·蛋白质组学的研究内容 | 第9-10页 |
·蛋白质组学的产生背景 | 第10页 |
·蛋白质组学研究的主要技术 | 第10-14页 |
·双向聚丙烯酰胺凝胶电泳(2-DE)--蛋白质分离的核心技术 | 第11-12页 |
·质谱技术--蛋白质鉴定的主要手段 | 第12-13页 |
·其他蛋白质组学研究技术 | 第13-14页 |
·蛋白质组数据库(Proteome data base) | 第14页 |
·植物蛋白质组学研究 | 第14-19页 |
·植物蛋白质组学的发展 | 第14-18页 |
·双向电泳技术在植物蛋白质组研究中的应用 | 第15-16页 |
·差异蛋白质组学在植物蛋白质组研究中的应用 | 第16-17页 |
·激素引起的植物差异蛋白质组学相关研究 | 第17-18页 |
·其他方面引起的植物差异蛋白质组学研究 | 第18页 |
·植物蛋白质组数据库 | 第18-19页 |
·本课题研究的内容和意义 | 第19-20页 |
第2章 PP_(333)处理黄瓜子叶节花芽分化过程中内源激素的研究 | 第20-28页 |
·前言 | 第20页 |
·材料与方法 | 第20-22页 |
·材料、药品与条件 | 第20页 |
·育苗与接种 | 第20-21页 |
·PP_(333)处理 | 第21页 |
·样品中激素的提取与含量的测定 | 第21-22页 |
·结果与分析 | 第22-26页 |
·PP_(333)处理黄瓜离体子叶节花芽分化过程中IAA的动态变化 | 第22-23页 |
·PP_(333)处理黄瓜离体子叶节花芽分化过程中GA的动态变化 | 第23-24页 |
·PP_(333)处理黄瓜离体子叶节花芽分化过程中ZR的动态变化 | 第24-25页 |
·PP_(333)处理黄瓜离体子叶节花芽分化过程中ABA的动态变化 | 第25-26页 |
·讨论 | 第26-28页 |
第3章 TIBA和PP_(333)处理对黄瓜离体子叶节花芽分化的影响 | 第28-34页 |
·前言 | 第28页 |
·材料与方法 | 第28-32页 |
·材料、药品与条件 | 第28页 |
·育苗与接种 | 第28页 |
·TIBA全程处理 | 第28-29页 |
·TIBA与PP_(333)全程处理 | 第29页 |
·结果与分析 | 第29-32页 |
·TIBA全程处理对黄瓜子叶节花芽分化的影响 | 第29-31页 |
·TIBA与PP_(333)配合处理对黄瓜子叶节花芽分化的影响 | 第31-32页 |
·讨论 | 第32-34页 |
第4章 PP_(333)处理黄瓜离体子叶节花芽分化的差异蛋白分析 | 第34-52页 |
·前言 | 第34页 |
·材料与方法 | 第34-41页 |
·组织培养材料 | 第34-35页 |
·材料、条件和药品 | 第34-35页 |
·方法 | 第35页 |
·双向电泳材料与方法 | 第35-41页 |
·生化试剂 | 第35页 |
·主要仪器 | 第35页 |
·溶液配制 | 第35-37页 |
·蛋白干粉的制备 | 第37页 |
·样品的溶解 | 第37页 |
·蛋白质标准曲线绘制 | 第37-38页 |
·样品液浓度的测定 | 第38页 |
·第一向:固相pH梯度等电聚焦(IEF) | 第38-39页 |
·胶条平衡 | 第39-40页 |
·第二向: SDS-PAGE电泳 | 第40-41页 |
·二维凝胶电泳分析 | 第41页 |
·结果与分析 | 第41-48页 |
·蛋白质含量标准曲线 | 第41页 |
·SDS-PAGE分离胶浓度的选择 | 第41-42页 |
·IEF胶条pH的选择 | 第42-43页 |
·两性电解质pH范围的选择 | 第43-44页 |
·上样量的选择 | 第44-45页 |
·PP_(333)处理黄瓜离体子叶节差异蛋白的分析 | 第45-48页 |
·讨论 | 第48-52页 |
·样品制备 | 第48-49页 |
·2-DE图谱的清晰度与分辨率 | 第49-52页 |
·样品溶剂的影响 | 第49页 |
·SDS电泳的影响 | 第49-50页 |
·染色 | 第50页 |
·差异蛋白与花芽分化 | 第50-52页 |
结论 | 第52-54页 |
附录 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-66页 |
攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第66-68页 |
致谢 | 第68-70页 |
个人简历 | 第70-72页 |