| 缩略语 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-27页 |
| 1 植物耐盐机理的分子生物学研究进展 | 第12-20页 |
| ·盐渍与植物生长之间的关系 | 第12-14页 |
| ·盐渍对植物的伤害 | 第12-13页 |
| ·植物耐盐途径 | 第13-14页 |
| ·植物耐盐生理机制的研究 | 第14-16页 |
| ·耐离子胁迫机制 | 第14页 |
| ·耐渗透胁迫机制 | 第14-15页 |
| ·胁迫信号系统与Ca离子调节 | 第15-16页 |
| ·耐盐基因在植物中的遗传转化 | 第16页 |
| ·AtNHX1基因与codA基因的遗传转化研究进展 | 第16-20页 |
| ·AtNHX1基因的遗传转化 | 第16-18页 |
| ·植物Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第17页 |
| ·AtNBX1基因的研究 | 第17-18页 |
| ·codA基因遗传转化的研究 | 第18-20页 |
| ·甜菜碱 | 第18-19页 |
| ·codA基因 | 第19-20页 |
| 2 果树遗传转化的研究进展 | 第20-25页 |
| ·常见果树的转基因研究现状 | 第20-21页 |
| ·果树基因转化方法 | 第21-25页 |
| ·农杆菌介导法 | 第21-22页 |
| ·基因枪法 | 第22页 |
| ·DNA直接摄取法 | 第22-23页 |
| ·超声波法 | 第23-24页 |
| ·超声波辅助农杆菌遗传转化法 | 第24-25页 |
| 3 蓝浆果基因转化的研究进展 | 第25-26页 |
| 4 展望 | 第26-27页 |
| 第二章 三个蓝浆果品种的离体茎段培养 | 第27-32页 |
| 1 材料与方法 | 第28页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·植物材料 | 第28页 |
| ·方法 | 第28页 |
| ·无菌苗的获得 | 第28页 |
| ·增殖培养 | 第28页 |
| ·生根培养 | 第28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-30页 |
| ·蓝浆果无菌苗的获得 | 第28-29页 |
| ·适合蓝浆果品种的基本培养基的筛选 | 第29页 |
| ·适合不同蓝浆果品种生长的激素的筛选 | 第29-30页 |
| ·不同蓝浆果品种的增殖培养 | 第30页 |
| ·蓝浆果无菌苗的生根及炼苗 | 第30页 |
| 3 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 伯克利和蓝丰蓝浆果的农杆菌介导的遗传转化体系的建立 | 第32-41页 |
| 1 材料与方法 | 第32-35页 |
| ·材料 | 第32-34页 |
| ·植物材料 | 第32页 |
| ·菌株和质粒 | 第32-33页 |
| ·供试菌株、质粒及基因的特性 | 第32-33页 |
| ·菌株的保存 | 第33页 |
| ·培养基 | 第33-34页 |
| ·蓝浆果基本培养基 | 第33页 |
| ·细菌培养基与培养液 | 第33-34页 |
| ·方法 | 第34-35页 |
| ·农杆菌的培养、活化 | 第34页 |
| ·农杆菌侵染时间的确定 | 第34页 |
| ·共培养时间的确定 | 第34-35页 |
| ·卡那霉素浓度的确定 | 第35页 |
| ·头孢霉素浓度的确定 | 第35页 |
| ·暗培养时间的确定 | 第35页 |
| 2.结果与分析 | 第35-39页 |
| ·适宜农杆菌侵染时间的确定 | 第35-36页 |
| ·适宜共培养时间的确定 | 第36-37页 |
| ·适宜卡那霉素浓度的确定 | 第37页 |
| ·头孢霉素浓度对叶片转化再生的影响 | 第37-38页 |
| ·适宜暗培养时间的确定 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 超声波辅助农杆菌介导法获得转AtNHX1基因蓝丰和转codA基因伯克利株系 | 第41-47页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| ·材料 | 第41-43页 |
| ·植物材料 | 第41页 |
| ·菌株和质粒 | 第41-42页 |
| ·供试菌株、质粒及基因的特性 | 第41-42页 |
| ·菌株的保存 | 第42页 |
| ·培养基 | 第42-43页 |
| ·蓝浆果基本培养基 | 第42-43页 |
| ·细菌培养基与培养液 | 第43页 |
| ·方法 | 第43-44页 |
| ·农杆菌的培养、活化 | 第43页 |
| ·超声波辅助农杆菌法对外植体的侵染与共培养 | 第43页 |
| ·采用超声波辅助农杆菌介导法将AtNHX1基因转入蓝丰 | 第43-44页 |
| ·不同超声波处理功率的影响 | 第44页 |
| ·gus基因瞬时表达检测 | 第44页 |
| ·采用超声波辅助农杆菌法将codA基因转入伯克利 | 第44页 |
| ·不同超声波处理时间的影响 | 第44页 |
| ·gus基因瞬时表达检测 | 第44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-46页 |
| ·不同超声波处理功率对转化蓝丰的影响 | 第44-45页 |
| ·不同超声波处理时间对转化伯克利的影响 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 第五章 AtNHX1基因和codA基因转化蓝浆果转基因植株的获得与检测 | 第47-59页 |
| 1 材料与方法 | 第47-54页 |
| ·材料 | 第47-51页 |
| ·植物材料 | 第47页 |
| ·菌株和质粒 | 第47-50页 |
| ·供试菌株、质粒及基因的特性 | 第47-50页 |
| ·菌株的保存 | 第50页 |
| ·GUS染色液的配方(总10ml体系) | 第50-51页 |
| ·DNA提取所用溶液 | 第51页 |
| ·方法 | 第51-54页 |
| ·遗传转化 | 第51页 |
| ·植物总DNA的提取 | 第51-52页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第52页 |
| ·检测 | 第52-54页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第53页 |
| ·PCR扩增检测 | 第53-54页 |
| ·电泳检测 | 第54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-57页 |
| ·转AtNHX1基因和codA基因蓝浆果抗性苗的获得 | 第54页 |
| ·转基因蓝浆果抗性植株的GUS染色 | 第54-56页 |
| ·转基因蓝浆果PCR检测 | 第56-57页 |
| 3 讨论 | 第57-59页 |
| 全文结论 | 第59-71页 |
| 图版 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
