| 第一章 绪论 | 第1-33页 |
| 1．1 蛋白质及多肽药物的特性 | 第13-14页 |
| 1．2 微球制剂的优点 | 第14页 |
| 1．3 常用的微球载体材料 | 第14-15页 |
| 1．3．1 天然高分子 | 第14页 |
| 1．3．2 半合成高分子 | 第14-15页 |
| 1．3．3 合成高分子 | 第15页 |
| 1．4 壳聚糖膜材简介 | 第15-18页 |
| 1．4．1 结构及制备方法 | 第15页 |
| 1．4．2 壳聚糖的特性 | 第15-18页 |
| 1．4．2．1 生物相容性 | 第16-17页 |
| 1．4．2．2 生物粘附性 | 第17页 |
| 1．4．2．3 生物降解性 | 第17-18页 |
| 1．5 传统壳聚糖微球的制备方法 | 第18-29页 |
| 1．5．1 乳化-交联法 | 第18-22页 |
| 1．5．1．1 制备工艺 | 第18-19页 |
| 1．5．1．2 交联剂 | 第19页 |
| 1．5．1．3 影响因素 | 第19-21页 |
| 1．5．1．4 优缺点 | 第21页 |
| 1．5．1．5 改进方法 | 第21-22页 |
| 1．5．2 乳化-溶剂蒸发法 | 第22页 |
| 1．5．2．1 制备工艺 | 第22页 |
| 1．5．2．2 优缺点 | 第22页 |
| 1．5．3 单凝聚法 | 第22-25页 |
| 1．5．3．1 制备工艺 | 第22-23页 |
| 1．5．3．2 影响因素 | 第23-24页 |
| 1．5．3．3 优缺点 | 第24页 |
| 1．5．3．4 改进方法 | 第24-25页 |
| 1．5．4 复凝聚法 | 第25-28页 |
| 1．5．4．1 制备工艺 | 第25-26页 |
| 1．5．4．2 影响因素 | 第26-27页 |
| 1．5．4．3 优缺点 | 第27-28页 |
| 1．5．5 喷雾干燥法 | 第28-29页 |
| 1．5．5．1 制备工艺 | 第28页 |
| 1．5．5．2 影响因素 | 第28-29页 |
| 1．5．5．3 优缺点 | 第29页 |
| 1．6 传统壳聚糖微球制备方法的缺点及应用上的缺陷 | 第29页 |
| 1．7 SPG(Shirasu Porous Glass)膜乳化技术介绍 | 第29-33页 |
| 1．7．1 SPG膜乳化技术的原理及装置 | 第29-31页 |
| 1．7．2 影响乳液粒径均一性的因素 | 第31-32页 |
| 1．7．3 SPG膜乳化的技术优势 | 第32-33页 |
| 第二章 SPG膜的修饰方法研究 | 第33-43页 |
| 2．1 引言 | 第33页 |
| 2．2 SPG膜修饰的基本原理及修饰流程 | 第33页 |
| 2．3 膜修饰效果的判断标准 | 第33-34页 |
| 2．4 实验材料和方法 | 第34-36页 |
| 2．4．1 实验材料 | 第34页 |
| 2．4．2 实验方法 | 第34-36页 |
| 2．4．2．1 SPG膜的修饰 | 第34-35页 |
| 2．4．2．2 接触角的测定 | 第35页 |
| 2．4．3．3 壳聚糖微球的制备 | 第35-36页 |
| 2．4．3．4 乳液粒径分布(CV值)的测定 | 第36页 |
| 2．4．3．5 微球形态观察 | 第36页 |
| 2．5 实验结果和讨论 | 第36-40页 |
| 2．5．1 膜的亲、疏水性对微球均一性的影响 | 第36页 |
| 2．5．2 修饰剂浓度、种类和修饰条件对膜修饰效果的影响 | 第36-40页 |
| 2．5．2．1 十八烷基三氯硅烷浓度及修饰条件对膜修饰效果的影响 | 第36-39页 |
| 2．5．2．2 KP-18C浓度对膜修饰效果的影响 | 第39页 |
| 2．5．2．3 两种修饰剂的比较 | 第39-40页 |
| 2．6 小结 | 第40-43页 |
| 第三章 以戊二醛为交联剂的直接载药研究 | 第43-53页 |
| 3．1 引言 | 第43页 |
| 3．2 实验材料和方法 | 第43-44页 |
| 3．2．1 实验材料 | 第43-44页 |
| 3．2．2 实验仪器 | 第44页 |
| 3．3 实验方法 | 第44-46页 |
| 3．3．1 壳聚糖溶解度测定 | 第44页 |
| 3．3．2 壳聚糖载药微球制备 | 第44-45页 |
| 3．3．3 壳聚糖微球表征 | 第45-46页 |
| 3．4 结果和讨论 | 第46-51页 |
| 3．4．1 壳聚糖的溶解性 | 第46页 |
| 3．4．2 交联剂用量和交联时间对微球形态的影响 | 第46-47页 |
| 3．4．3 交联剂用量和交联时间对包埋率的影响 | 第47-49页 |
| 3．4．4 交联剂用量和交联时间对体外释药特性的影响 | 第49-50页 |
| 3．4．5 制备过程对胰岛素活性的影响 | 第50-51页 |
| 3．5 小结 | 第51-53页 |
| 第四章 TPP结合戊二醛分步固化法制备壳聚糖载药微球的研究 | 第53-79页 |
| 4．1 引言 | 第53-54页 |
| 4．2 实验材料和仪器 | 第54-55页 |
| 4．2．1 实验材料 | 第54-55页 |
| 4．2．2 实验仪器 | 第55页 |
| 4．3 实验方法 | 第55-57页 |
| 4．3．1 分步固化法壳聚糖载药微球的制备 | 第55页 |
| 4．3．2 微球表征 | 第55-56页 |
| 4．3．3 药物活性测定 | 第56-57页 |
| 4．4 结果和讨论 | 第57-76页 |
| 4．4．1 水相pH值的选择 | 第57-60页 |
| 4．4．2 水相添加剂种类的选择 | 第60-61页 |
| 4．4．3 水相添加剂用量的选择 | 第61-63页 |
| 4．4．4 TPP用量的选择 | 第63-66页 |
| 4．4．5 TPP溶液pH值的选择 | 第66-69页 |
| 4．4．6 戊二醛用量的选择 | 第69-71页 |
| 4．4．7 戊二醛交联时间的选择 | 第71-74页 |
| 4．4．8 壳聚糖分子量的影响 | 第74-75页 |
| 4．4．9 水相中药物浓度的影响 | 第75-76页 |
| 4．5 分步固化法壳聚糖载药微球制备条件优化结果 | 第76-77页 |
| 4．6 小结 | 第77-79页 |
| 第五章 分步固化法与—步固化法的结果比较 | 第79-85页 |
| 5．1 引言 | 第79页 |
| 5．2 比较的项目及结果 | 第79-84页 |
| 5．2．1 载药微球形态的比较 | 第79-81页 |
| 5．2．2 药物装载率的比较 | 第81页 |
| 5．2．3 体外释药行为的比较 | 第81-83页 |
| 5．2．4 药物活性的比较 | 第83-84页 |
| 5．3 小结 | 第84-85页 |
| 第六章 结论与展望 | 第85-87页 |
| 6．1 论文所取得的成果 | 第85-86页 |
| 6．2 进一步工作的建议 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-95页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第95-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
