| 英文缩写 | 第1-11页 |
| 绪论 | 第11-34页 |
| 1. 脊髓损伤后神经细胞凋亡的机制研究 | 第12-21页 |
| ·细胞凋亡的概念及形态、生化改变 | 第12-14页 |
| ·细胞凋亡的检测方法 | 第14-15页 |
| ·脊髓损伤细胞凋亡的主要诱导因素 | 第15-16页 |
| ·急性脊髓损伤细胞调亡相关基因研究进展 | 第16-19页 |
| ·脊髓损伤后的凋亡蛋白酶(Caspase)的作用 | 第19页 |
| ·死亡受体和脊髓损伤后细胞凋亡的信号传导通路 | 第19-20页 |
| ·目前关于脊髓损伤细胞凋亡治疗的研究 | 第20-21页 |
| 2. 基因治疗研究发展及发展前景 | 第21-27页 |
| ·基因治疗的基本概念 | 第21页 |
| ·基因治疗的途径 | 第21-22页 |
| ·基因治疗的基因导入系统 | 第22-26页 |
| ·基因治疗需要解决的问题 | 第26-27页 |
| ·基因治疗的前景 | 第27页 |
| 3. 人胰岛素样生长因子1 在神经系统损伤中的治疗作用 | 第27-33页 |
| ·IGF-1 的结构及其作用方式 | 第28-29页 |
| ·IGF-1 在神经系统的作用 | 第29-31页 |
| ·IGF-1 的神经系统保护作用的作用机制 | 第31-33页 |
| 4. 本研究的立题依据 | 第33-34页 |
| 实验一 IGF-1真核细胞表达质粒的构建及其对神经胶质瘤细胞凋亡的影响 | 第34-54页 |
| 1. 实验材料 | 第34-36页 |
| ·试剂 | 第34页 |
| ·器材 | 第34页 |
| ·主要仪器 | 第34-35页 |
| ·质粒与菌株 | 第35页 |
| ·细胞株 | 第35-36页 |
| 2. 实验方法 | 第36-47页 |
| ·表达载体构建 | 第36-41页 |
| ·体外实验技术 | 第41-47页 |
| ·统计学方法 | 第47页 |
| 3. 结果 | 第47-49页 |
| ·人胰岛素样生长因子1 重组质粒的构建 | 第47页 |
| ·cDNA3.1-hIGF1转染神经胶质瘤细胞 | 第47-48页 |
| ·稳定转染细胞株的Western blot检测鉴定 | 第48页 |
| ·ELISA法测定C6细胞上清液中hIGF-1含量 | 第48页 |
| ·流式细胞术检测蛋白质表达 | 第48页 |
| ·IGF-1对细胞凋亡的影响(FCM) | 第48-49页 |
| ·IGF-1对细胞凋亡的影响(TUNEL) | 第49页 |
| 4. 讨论 | 第49-54页 |
| 实验二 pcDNA-hIGF1对SCI大鼠模型神经细胞凋亡的影响 | 第54-72页 |
| 1. 实验材料 | 第54页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·试剂 | 第54页 |
| 2. 实验方法 | 第54-61页 |
| ·大鼠SCI模型建立及pcDNA-hIGF1体内转染 | 第54-55页 |
| ·SCI大鼠脊髓透射电镜观察 | 第55页 |
| ·动物脊髓标本切片HE、尼氏染色 | 第55-57页 |
| ·动物脊髓标本免疫组化检测 | 第57-58页 |
| ·SCI大鼠脊髓神经细胞凋亡的检测(TUNEL Assay) | 第58-59页 |
| ·SCI大鼠运动功能的检测 | 第59-61页 |
| ·统计学方法 | 第61页 |
| 3. 实验结果 | 第61-63页 |
| ·大鼠SCI模型建立 | 第61页 |
| ·电镜观察结果 | 第61页 |
| ·HE 及尼氏染色 | 第61-62页 |
| ·大鼠脊髓内神经细胞IGF-1蛋白免疫组化检测 | 第62页 |
| ·SCI大鼠脊髓神经细胞凋亡的检测(TUNEL assay) | 第62-63页 |
| ·实验动物肢体功能检测 | 第63页 |
| 4. 讨论 | 第63-71页 |
| ·SCI模型的建立以及BBB评分 | 第63-67页 |
| ·脊髓损伤后神经细胞凋亡的时间及空间分布特点 | 第67-68页 |
| ·IGF-1转染对神经细胞凋亡的影响作用 | 第68-71页 |
| 结论 | 第71页 |
| 实验不足与展望 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-86页 |
| 附图 | 第86-102页 |
| 攻读博士期间发表论文 | 第102-103页 |
| 中文摘要 | 第103-106页 |
| 英文摘要 | 第106-109页 |
| 致谢 | 第109页 |
