大鼠全脑缺血海马区Nestin和bFGF表达的研究
引言 | 第1-8页 |
第一章 材料和方法 | 第8-14页 |
·材料 | 第8-10页 |
·主要实验仪器 | 第8页 |
·主要实验试剂 | 第8-9页 |
·主要试剂配制 | 第9页 |
·实验动物 | 第9-10页 |
·主要实验方法 | 第10-14页 |
·动物模型的建立 | 第10页 |
·标本制作 | 第10页 |
·HE染色步骤 | 第10-11页 |
·尼氏染色 | 第11页 |
·TTC染色 | 第11页 |
·Nestin免疫组化染色 | 第11-12页 |
·bFGF免疫组化染色 | 第12页 |
·免疫组化阳性细胞的观察 | 第12-13页 |
·统计学处理 | 第13-14页 |
第二章 结果 | 第14-18页 |
·HE染色结果 | 第14页 |
·Nissl染色结果 | 第14页 |
·TTC染色结果 | 第14页 |
·Nestin蛋白免疫组织化学染色结果 | 第14-16页 |
·bFGF蛋白免疫组织化学染色结果 | 第16-18页 |
第三章 讨论 | 第18-25页 |
·大鼠脑缺血模型 | 第18-19页 |
·二血管阻断缺血模型 | 第18页 |
·三血管阻断脑缺血模型 | 第18页 |
·土鼠全脑缺血模型沙土鼠脑缺血模型 | 第18页 |
·四血管闭塞法 | 第18-19页 |
·四血管闭塞法模型制作 | 第19页 |
·方法 | 第19页 |
·确定是否缺血 | 第19页 |
·大鼠的选择 | 第19-20页 |
·Nestin及脑缺血后Nestin表达 | 第20-21页 |
·bFGF及脑缺血后bFGF表达 | 第21页 |
·脑缺血后神经再生和内源性神经干细胞活化 | 第21-23页 |
·研究展望 | 第23-25页 |
结论 | 第25-26页 |
附图 | 第26-38页 |
参考文献 | 第38-41页 |
致谢 | 第41-42页 |
文献综述 | 第42-60页 |
声明 | 第60页 |