| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 常用缩略语表 | 第10-11页 |
| 第一章 引言 | 第11-30页 |
| ·光合作用 | 第11-13页 |
| ·光合作用概述 | 第11-12页 |
| ·光合作用的过程 | 第12-13页 |
| ·蓝藻的光合作用 | 第13-14页 |
| ·蓝藻的主要捕光天线-藻胆体 | 第14-18页 |
| ·藻胆体的结构 | 第15-16页 |
| ·藻胆体的组成 | 第16-17页 |
| ·藻胆体的功能 | 第17-18页 |
| ·蓝藻的状态转换 | 第18-20页 |
| ·活体内荧光成像技术 | 第20-28页 |
| ·荧光标记技术 | 第20-24页 |
| ·荧光成像技术 | 第24-28页 |
| ·论文工作的目的及意义 | 第28-30页 |
| 第二章 实验材料与基本实验方法 | 第30-36页 |
| ·藻种 | 第30页 |
| ·实验用生化试剂 | 第30页 |
| ·仪器与设备 | 第30页 |
| ·基本实验方法 | 第30-36页 |
| ·蓝藻培养 | 第30-31页 |
| ·BG-11 培养基的配制 | 第31-32页 |
| ·藻细胞收集 | 第32页 |
| ·吸收光谱 | 第32页 |
| ·叶绿素的含量测定 | 第32-33页 |
| ·光合放氧活性及呼吸速率测定 | 第33-34页 |
| ·蓝藻的状态诱导 | 第34页 |
| ·77K 低温荧光谱 | 第34-36页 |
| 第三章 活细胞内FRAP 技术平台的建立 | 第36-40页 |
| ·FRAP 的原理 | 第36页 |
| ·理想FRAP 实验的曲线图 | 第36-37页 |
| ·FRAP 染料的选择 | 第37页 |
| ·FRAP 实验所用模式藻:Synechococcus sp. PCC 7942 | 第37页 |
| ·FRAP 实验步骤及注意事项 | 第37-38页 |
| ·漂白前 | 第37-38页 |
| ·漂白过程 | 第38页 |
| ·漂白后 | 第38页 |
| ·本论文中所用FRAP 实验的程序 | 第38页 |
| ·FRAP 实验数据的处理 | 第38-40页 |
| 第四章 利用活细胞FRAP 技术研究蓝藻藻胆体的动态扩散及其调控因素 | 第40-53页 |
| ·前言 | 第40-41页 |
| ·材料和方法 | 第41-43页 |
| ·细胞培养 | 第41页 |
| ·77K 荧光发射谱 | 第41-42页 |
| ·FRAP 实验 | 第42-43页 |
| ·FRAP 实验数据的处理 | 第43页 |
| ·实验结果 | 第43-50页 |
| ·BQ 对蓝藻状态转换的影响 | 第43-47页 |
| ·BQ 处理对蓝藻藻胆体动态扩散的影响 | 第47-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| ·结论 | 第52-53页 |
| 第五章 蓝藻活体内FRET技术的建立及对蓝藻NAD(P)H脱氢酶复合物亚基之间相互作用的初步研究 | 第53-65页 |
| ·前言 | 第53-54页 |
| ·蓝藻NAD(P)H 脱氢酶复合物概述 | 第53页 |
| ·蓝藻中存在不同功能类型的NDH 复合物 | 第53-54页 |
| ·NDH 的亚基组成 | 第54页 |
| ·实验设计 | 第54-56页 |
| ·实验方法及结果 | 第56-63页 |
| ·荧光蛋白标记突变株的构建 | 第56页 |
| ·细胞培养及藻种保存 | 第56页 |
| ·野生型及突变株细胞光合放氧及呼吸速率测定 | 第56页 |
| ·蓝藻活体内FRET 测定方法 | 第56-63页 |
| ·本章小结 | 第63-65页 |
| 第六章 结论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第77页 |
