| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-22页 |
| ·植物细胞融合 | 第9页 |
| ·植物原生质体的制备和纯化 | 第9-13页 |
| ·植物基因型的选择 | 第10页 |
| ·制取原生质体的材料选择 | 第10-11页 |
| ·植物原生质体的预处理 | 第11页 |
| ·植物原生质体的酶解 | 第11-13页 |
| ·植物原生质体的纯化 | 第13页 |
| ·植物原生质体的活力鉴定 | 第13页 |
| ·植物细胞融合技术 | 第13-15页 |
| ·PEG-高pH、高钙法诱导融合法 | 第13-14页 |
| ·植物原生质体电场诱导融合法 | 第14-15页 |
| ·植物杂种细胞筛选鉴定 | 第15-17页 |
| ·植物原生质体的培养 | 第17-22页 |
| ·原生质体培养基 | 第17-18页 |
| ·植物原生质体的培养方法 | 第18-20页 |
| ·植物原生质体的发育和植株再生 | 第20-22页 |
| 第二章 绪论 | 第22-24页 |
| 第三章 苜蓿离体再生体系的建立 | 第24-31页 |
| ·引言 | 第24页 |
| ·材料与方法 | 第24-26页 |
| ·材料 | 第24页 |
| ·方法 | 第24-26页 |
| ·结果 | 第26-31页 |
| ·苜蓿基因型与基础培养基的选择结果 | 第26-27页 |
| ·培养基激素组合对苜蓿愈伤组织诱导的影响 | 第27-28页 |
| ·培养基激素组合对胚性苜蓿愈伤组织诱导的影响 | 第28-30页 |
| ·胚性愈伤组织分化成苗 | 第30-31页 |
| 第四章 百脉根再生体系的建立 | 第31-37页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·材料与方法 | 第31-33页 |
| ·材料 | 第31页 |
| ·方法 | 第31-33页 |
| ·结果 | 第33-37页 |
| ·基础培养基对百脉根叶片愈伤组织诱导影响 | 第33页 |
| ·培养基激素组合对百脉根愈伤组织诱导的影响 | 第33-35页 |
| ·培养基激素组合对百脉根愈伤组织分化的影响 | 第35-36页 |
| ·培养基对百脉根生根的影响 | 第36-37页 |
| 第五章 苜蓿和百脉根细胞融合的研究 | 第37-45页 |
| ·引言 | 第37页 |
| ·材料与方法 | 第37-40页 |
| ·材料 | 第37页 |
| ·方法 | 第37-40页 |
| ·结果 | 第40-45页 |
| ·酶液组合对原生质体制备的影响 | 第40页 |
| ·IOA和R6G对苜蓿、百脉根叶片原生质体分裂率的影响 | 第40-42页 |
| ·苜蓿、百脉根叶片原生质体融合的最佳条件 | 第42-43页 |
| ·融合后原生质体的培养及杂交后代的鉴定 | 第43-45页 |
| 第六章 结论与讨论 | 第45-48页 |
| ·苜蓿基因型为影响苜蓿离体再生的关键因素 | 第45页 |
| ·培养基对苜蓿、百脉根组织培养具有显著影响 | 第45-46页 |
| ·酶解因素决定原生质体产量及活力 | 第46页 |
| ·PEG浓度、Ca2+浓度、pH值直接影响原生质体融合率 | 第46页 |
| ·IOA-R-6G体系对苜蓿与百脉根融合体筛选有效 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 缩略词表 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 学期间发表的文章和参加的课题 | 第56页 |
