| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-18页 |
| 本文的缩写词表 | 第18-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-34页 |
| 1．1 概述 | 第21页 |
| 1．2 我国触目惊心的水污染现状 | 第21-22页 |
| 1．3 化学絮凝剂的现状与突出缺陷 | 第22-23页 |
| 1．4 微生物絮凝剂的研究进展 | 第23-27页 |
| 1．5 微生物絮凝剂是当今社会的迫切需求 | 第27-28页 |
| 1．6 选题的依据、科学意义及拟研究的内容 | 第28-31页 |
| 第一章参考文献 | 第31-34页 |
| 第二章 微生物絮凝剂产生菌节杆菌 LF- Tou2的分离与优化培养 | 第34-74页 |
| 2．1 材料与方法 | 第34-39页 |
| 2．1．1 取样 | 第34页 |
| 2．1．2 菌种分离 | 第34-35页 |
| 2．1．3 培养基 | 第35页 |
| 2．1．4 培养 | 第35页 |
| 2．1．5 细胞生长的测定 | 第35页 |
| 2．1．6 絮凝活性的测定 | 第35页 |
| 2．1．7 还原糖含量的测定 | 第35-36页 |
| 2．1．8 多糖含量的测定 | 第36页 |
| 2．1．9 葡萄糖基转移酶活性的测定 | 第36页 |
| 2．1．10 细胞形态、生理、生化特征分析 | 第36页 |
| 2．1．11 16S rRNA分析的基因组DNA提取 | 第36-37页 |
| 2．1．12 16S rRNA序列分析 | 第37-38页 |
| 2．1．13 序列对GenBank的提交(submission)及鉴定比对(Blast) | 第38页 |
| 2．1．14 分批补加培养 | 第38页 |
| 2．1．15 菌体及大分子生物量提取 | 第38-39页 |
| 2．2 结果 | 第39-67页 |
| 2．2．1 分离菌种的形态、生理特征与生化特征 | 第39-40页 |
| 2．2．2 分离菌株LF-Tou2的16S rDNA分析 | 第40-60页 |
| 2．2．3 最优化培养条件研究 | 第60-65页 |
| 2．2．4 培养的动态分析 | 第65-67页 |
| 2．3 讨论 | 第67-69页 |
| 2．4 结论 | 第69-70页 |
| 第二章参考文献 | 第70-74页 |
| 第三章 节杆菌 LF-Tou2生物絮凝剂的絮凝机理及絮凝模式 | 第74-87页 |
| 3．1 材料与方法 | 第74-76页 |
| 3．1．1 菌种 | 第74页 |
| 3．1．2 培养方法 | 第74页 |
| 3．1．3 各种重金属离子的检测方法 | 第74页 |
| 3．1．4 Ca~(2+)阳离子的作用方式试验 | 第74-75页 |
| 3．1．5 絮凝功能的影响因子试验 | 第75-76页 |
| 3．2 结果与讨论 | 第76-84页 |
| 3．2．1 环境因素对絮凝剂活性展示的影响 | 第76-79页 |
| 3．2．2 LF-Tou2细胞培养及絮凝剂絮凝对重金属阳离子的吸附去除作用 | 第79-81页 |
| 3．2．3 絮凝功能的影响因子研究 | 第81-83页 |
| 3．2．4 絮凝模式 | 第83-84页 |
| 3．3 结论 | 第84-85页 |
| 第三章参考文献 | 第85-87页 |
| 第四章 节杆菌LF-Tou2絮凝剂的纯化与结构特征 | 第87-108页 |
| 4．1 材料与方法 | 第87-91页 |
| 4．1．1 菌种 | 第87页 |
| 4．1．2 培养基和培养条件 | 第87页 |
| 4．1．3 多糖含量的测定 | 第87-88页 |
| 4．1．4 用 CTAB制备多糖纯化样品 | 第88页 |
| 4．1．5 DEAE-Sepharose Fast Flow多糖纯化柱层析 | 第88页 |
| 4．1．6 Sephadex G-200多糖纯化柱层析 | 第88-89页 |
| 4．1．7 多糖的蛋白质含量测定 | 第89页 |
| 4．1．8 多糖分子量测定(凝胶色谱法) | 第89页 |
| 4．1．9 多糖的红外光谱测定 | 第89页 |
| 4．1．10 多糖的单糖组分及摩尔比计算-毛细管电泳法 | 第89-90页 |
| 4．1．11 多糖中单糖组分的TLC分析 | 第90-91页 |
| 4．1．12 多糖的~1H-NMR和~(13)C-NMR波谱分析 | 第91页 |
| 4．1．13 多糖的氨基酸组分含量分析 | 第91页 |
| 4．2 结果 | 第91-103页 |
| 4．2．1 絮凝剂多糖的纯化 | 第91-93页 |
| 4．2．2 纯化样品的紫外吸收分析 | 第93-94页 |
| 4．2．3 远红外光谱扫描 | 第94-95页 |
| 4．2．4 ~1H-MR和~(13)C-NMR波谱分析 | 第95-96页 |
| 4．2．5 纯化多糖分子量的测定 | 第96-99页 |
| 4．2．6 纯化多糖得单糖组成及其摩尔比分析 | 第99-101页 |
| 4．2．7 纯化多糖中的蛋白质组分的氨基酸分析仪分析 | 第101-103页 |
| 4．3 讨论 | 第103-105页 |
| 4．4 总结 | 第105页 |
| 参考文献 | 第105-108页 |
| 第五章 节杆菌 LF-Tou2葡萄糖基转移酶的性质与化学修饰 | 第108-146页 |
| 5．1 材料与方法 | 第108-114页 |
| 5．1．1 菌种 | 第108页 |
| 5．1．2 培养基 | 第108页 |
| 5．1．3 葡萄糖基转移酶活性的标准测定方法 | 第108-109页 |
| 5．1．4 葡萄糖基转移酶的制备 | 第109页 |
| 5．1．5 纯度的测定 | 第109-110页 |
| 5．1．6 SDS-聚丙稀酞胺凝胶电泳法测分子质量 | 第110页 |
| 5．1．7 MALDI-TOF-MS分子质量的测定 | 第110页 |
| 5．1．8 葡萄糖基转移酶 K_m值与V_(max)的测定 | 第110-111页 |
| 5．1．9 最适反应温度及热稳定性，最适反应pH及pH稳定性，金属离子及 EDTA对酶活性的影响的测定 | 第111页 |
| 5．1．10 圆二色谱分析 | 第111页 |
| 5．1．11 酶的化学修饰 | 第111-112页 |
| 5．1．12 pI分析 | 第112-114页 |
| 5．1．13 葡萄糖基转移酶的氨基酸组成分析 | 第114页 |
| 5．2 研究结果 | 第114-128页 |
| 5．2．1 葡萄糖基转移酶的纯化 | 第114-115页 |
| 5．2．2 葡萄糖基转移酶的酶学性质 | 第115-124页 |
| 5．2．3 酶的化学修饰 | 第124-128页 |
| 5．3 讨论 | 第128-134页 |
| 5．4 结论 | 第134页 |
| 第五章参考文献 | 第134-146页 |
| 第六章 微生物絮凝剂生产的发酵中试和效果试验 | 第146-166页 |
| 6．1 材料与方法 | 第146-147页 |
| 6．1．1 培养用菌种 | 第146页 |
| 6．1．2 培养基和培养条件 | 第146页 |
| 6．1．3 多糖含量的测定 | 第146-147页 |
| 6．1．4 蛋白多糖絮凝剂沉淀重量的测定 | 第147页 |
| 6．1．5 2000L中试罐的发酵动态分析 | 第147页 |
| 6．2 结果 | 第147-159页 |
| 6．2．1 2000L中试罐的发酵动态分析 | 第147-150页 |
| 6．2．2 下游条件对微生物絮凝剂提取收率的影响 | 第150-152页 |
| 6．2．3 现场不同样品的处理效果 | 第152-158页 |
| 6．2．4 处理现场不同样品的生物絮凝剂使用成本概算 | 第158页 |
| 6．2．5 与化学絮凝剂的用量和絮凝效果比较 | 第158页 |
| 6．2．6 与国外研究的微生物絮凝剂的部分参数对比分析 | 第158-159页 |
| 6．3 讨论 | 第159-161页 |
| 6．4 总结 | 第161-162页 |
| 第六章参考文献 | 第162-166页 |
| 第七章 微生物絮凝剂制品的毒理试验 | 第166-171页 |
| 7．1 材料与方法 | 第166-168页 |
| 7．1．1 培养用菌种 | 第166页 |
| 7．1．2 培养基和培养条件 | 第166页 |
| 7．1．3 多糖含量的测定 | 第166页 |
| 7．1．4 蛋白多糖絮凝剂沉淀重量的测定 | 第166页 |
| 7．1．5 急性经口毒性试验 | 第166-167页 |
| 7．1．6 Ames试验方法 | 第167页 |
| 7．1．7 小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验 | 第167-168页 |
| 7．2 结果 | 第168-170页 |
| 7．2．1 急性经口毒性试验 | 第168页 |
| 7．2．2 Ames试验 | 第168-169页 |
| 7．2．3 小鼠骨骼嗜多染红细胞微核试验 | 第169-170页 |
| 7．3 总结 | 第170页 |
| 第七章参考文献 | 第170-171页 |
| 总结与展望 | 第171-174页 |
| 致谢 | 第174-175页 |
| 在读博士期间发表的论文和科研成果 | 第175-176页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第176页 |
