| 英文缩写对照表 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-17页 |
| 引言 | 第17-20页 |
| 第一章 人食管癌组织polβ基因和POLB及XRCC1表达水平及定位的研究 | 第20-43页 |
| ·前言 | 第20-21页 |
| ·材料与方法 | 第21-29页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·切片标本制备: | 第23-24页 |
| ·组织总RNA提取: | 第24页 |
| ·制备标记的polβcDNA探针 | 第24-25页 |
| ·标记探针灵敏度检测 | 第25-26页 |
| ·原位杂交 | 第26-27页 |
| ·RNA斑点印迹 | 第27-28页 |
| ·免疫组化染色 | 第28-29页 |
| ·统计学分析 | 第29页 |
| ·结果 | 第29-38页 |
| ·polβ片段分离纯化: | 第29-30页 |
| ·标记探针灵敏度检测 | 第30页 |
| ·原位杂交标本观察 | 第30-33页 |
| ·RNA斑点印迹 | 第33页 |
| ·免疫组化定位观察 | 第33-37页 |
| ·PolB和XRCC1表达水平 | 第37-38页 |
| ·PolB-IR与XRCC1-IR两者的相关性 | 第38页 |
| ·讨论 | 第38-41页 |
| ·本章小结 | 第41-43页 |
| 第二章 分化诱导剂处理的Eca-109细胞中polβ、wp53及MRP的表达 | 第43-60页 |
| ·前言 | 第43页 |
| ·材料和方法 | 第43-50页 |
| ·实验材料 | 第43-44页 |
| ·标记探针的制备 | 第44-45页 |
| ·探针的灵敏度检测 | 第45-46页 |
| ·细胞标本的制备 | 第46-47页 |
| ·原位杂交技术 | 第47-49页 |
| ·免疫细胞化学 | 第49-50页 |
| ·统计学分析 | 第50页 |
| ·结果 | 第50-58页 |
| ·探针灵敏度检测 | 第50页 |
| ·生物素标记的polβ探针杂交信号标本 | 第50-53页 |
| ·MRP-IR | 第53-56页 |
| ·双杂交信号细胞标本 | 第56-58页 |
| ·讨论 | 第58-59页 |
| ·本章小结 | 第59-60页 |
| 第三章 pcDNA3-wpolβ转染Eca-109细胞的生物学效应 | 第60-81页 |
| ·前言: | 第60页 |
| ·材料和方法 | 第60-66页 |
| ·实验材料 | 第60-61页 |
| ·体外转录wpolβ的反义RNA(cRNA)探针的制备 | 第61-62页 |
| ·Biotin-cRNA探针灵敏度检测: | 第62-63页 |
| ·建立稳定转染的Eca-109细胞系 | 第63-64页 |
| ·免疫细胞化学 | 第64-65页 |
| ·原位杂交 | 第65-66页 |
| ·增殖细胞比率记数 | 第66页 |
| ·统计学分析 | 第66页 |
| ·结果: | 第66-77页 |
| ·pcDNA3-wpolbeta的鉴定与分析: | 第66-68页 |
| ·探针灵敏度检测 | 第68-69页 |
| ·免疫细胞化学染色 | 第69-73页 |
| ·原位杂交信号 | 第73-76页 |
| ·增殖细胞比率 | 第76-77页 |
| ·讨论 | 第77-79页 |
| ·本章小结 | 第79-81页 |
| 结论 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-94页 |
| 综述 | 第94-118页 |
| 综述一 DNA聚合酶B的结构及生物学性质 | 第94-107页 |
| 综述二 DNA聚合酶B与肿瘤的关系 | 第107-118页 |
