| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1 引言 | 第10-16页 |
| ·乙烯与作物果实成熟 | 第10-12页 |
| ·乙烯的概述 | 第10-11页 |
| ·乙烯对跃变型果实成熟衰老的调控 | 第11页 |
| ·乙烯对非跃变型果实成熟衰老调控 | 第11-12页 |
| ·果实ACC 合成酶基因的研究进展 | 第12-13页 |
| ·ACC 合成酶是多基因家族 | 第12页 |
| ·植物ACC 合成酶基因的诱导因子 | 第12-13页 |
| ·果实成熟基因的启动子 | 第13-15页 |
| ·启动子的概念 | 第13页 |
| ·真核生物启动子的结构模型 | 第13页 |
| ·启动子的分类 | 第13-14页 |
| ·果实特异启动子的研究进展 | 第14-15页 |
| ·本研究的内容和目的 | 第15-16页 |
| 2 材料和方法 | 第16-28页 |
| ·植物材料与试剂 | 第16页 |
| ·试验方法 | 第16-28页 |
| ·RNA 的提取 | 第16-17页 |
| ·cDNA 第一条链的合成 | 第17页 |
| ·西瓜ACC 合成酶基因保守序列的获得（RT-PCR） | 第17-18页 |
| ·目的片段的回收 | 第18-19页 |
| ·目的片段的连接 | 第19-20页 |
| ·ClACS1 基因3′UTR 的获得 | 第20-23页 |
| ·ClACS1 基因5′UTR 的获得 | 第23-25页 |
| ·西瓜ClACS1 基因全长的克隆 | 第25页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白生物信息学分析 | 第25-26页 |
| ·ClACS1 基因启动子的克隆 | 第26页 |
| ·ClACS1 基因启动子的生物信息学分析 | 第26-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-48页 |
| ·总RNA 的浓度和纯度 | 第28页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第28-29页 |
| ·ACC 合成酶基因保守区域的PCR 扩增 | 第29-30页 |
| ·ClACS1 基因3′末端序列PCR 扩增 | 第30-31页 |
| ·ClACS1 基因5′末端序列PCR 扩增 | 第31-33页 |
| ·ClACS1 基因全长的扩增 | 第33页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的生物信息学分析 | 第33-39页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的氨基酸序列分析 | 第33-34页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的亲疏水性分析 | 第34-35页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的信号肽分析 | 第35-36页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的跨膜域预测 | 第36页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的保守结构域分析 | 第36页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的亚细胞定位预测 | 第36-37页 |
| ·ClACS1 基因编码蛋白的功能预测 | 第37页 |
| ·ClACS1 基因和其它作物同源性分析 | 第37-39页 |
| ·ClACS1 基因启动子的扩增 | 第39-40页 |
| ·ClACS1 基因启动子的生物信息学分析 | 第40-48页 |
| ·ClACS1 基因潜在的启动子区及转录结合位点的预测 | 第40-41页 |
| ·ClACS1 基因启动子含有的重要调控元件分析 | 第41-48页 |
| 4 讨论 | 第48-52页 |
| ·同源克隆技术获得ClACS1 基因 | 第48页 |
| ·RACE 技术获得ClACS1 基因的5′端 | 第48-49页 |
| ·染色体步移技术获得ClACS1 基因的3′端和启动子序列 | 第49页 |
| ·ClACS1 基因编码的蛋白分析 | 第49-50页 |
| ·ClACS1 基因的分析 | 第50页 |
| ·启动子序列的分析 | 第50-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第59页 |
| 在读期间获得的技术成果 | 第59-60页 |
| 作者简历 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 附录1：试验所用载体图 | 第62-63页 |
| 附录2：试验中所用试剂配方 | 第63-64页 |
