| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 材料与方法 | 第11-27页 |
| ·主要材料 | 第11页 |
| ·主要设备 | 第11页 |
| ·实验动物 | 第11页 |
| ·受试人群 | 第11-12页 |
| ·实验技术路线 | 第12页 |
| ·融合蛋白8.4H和H8.4的表达及条件的优化 | 第12-13页 |
| ·融合蛋白的纯化及保存条件 | 第13-14页 |
| ·蛋白浓度测定 | 第14-15页 |
| ·蛋白SDS-PAGE电泳相关试剂配制及方法 | 第15-17页 |
| ·纯化后杂质的检测 | 第17-18页 |
| ·ELISPOT方法检测融合蛋白8.4H和H8.4在人群中诱导的免疫应答 | 第18-19页 |
| ·疫苗制备 | 第19-20页 |
| ·亚单位疫苗免疫小鼠及感染、检测流程 | 第20-21页 |
| ·小鼠血清及脾脏淋巴细胞的收集 | 第21-22页 |
| ·脾脏淋巴细胞的孵育和细胞培养上清液收集及分装保存 | 第22页 |
| ·ELISA方法测定结核抗原特异性IFN-γ、IL-2、TNF-α(试剂盒) | 第22-23页 |
| ·间接ELISA法检测小鼠血清抗体滴度 | 第23-24页 |
| ·ELISPOT试剂盒检测8.4H-DPG与H8.4-DPG组小鼠IFN-γ水平 | 第24页 |
| ·H37Rv毒株攻击小鼠及免疫保护效果评价 | 第24-26页 |
| ·统计学分析 | 第26-27页 |
| 实验结果 | 第27-36页 |
| ·融合蛋白8.4H和H8.4的表达与纯化 | 第27-28页 |
| ·蛋白8.4H和H8.4能够刺激人PBMC产生强烈的免疫应答 | 第28页 |
| ·亚单位疫苗8.4H-DPG和H8.4-DPG刺激小鼠脾淋巴细胞分泌高水平的IFN-γ | 第28-29页 |
| ·亚单位疫苗8.4H-DPG和H8.4-DPG保护效果差异及组织病理学评价 | 第29-30页 |
| ·亚单位疫苗8.4H-DDA和H8.4-DDA细胞免疫和体液免疫差异 | 第30-31页 |
| ·亚单位疫苗8.4H-DDA接种剂量和免疫效应的关系 | 第31-36页 |
| 讨论 | 第36-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 展望 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 文献综述 | 第44-51页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文和成果 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
