| 缩略语表 | 第7-12页 |
| 中文摘要 | 第12-16页 |
| ABSTRACT | 第16-20页 |
| 前言 | 第21-23页 |
| 文献回顾 | 第23-48页 |
| 第一部分 AS患者幼稚性T细胞增殖、凋亡及向CD4~+T细胞亚群分化功能 | 第48-59页 |
| 1 材料 | 第48-50页 |
| 1.1 标本来源 | 第48-49页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第49页 |
| 1.3 主要试剂 | 第49-50页 |
| 1.4 主要缓冲液 | 第50页 |
| 2 方法 | 第50-53页 |
| 2.1 Tn细胞分选 | 第50-51页 |
| 2.2 Tn细胞增殖检测 | 第51-52页 |
| 2.3 Tn细胞凋亡检测 | 第52页 |
| 2.4 诱导Tn细胞向Th17细胞分化检测 | 第52-53页 |
| 2.5 统计分析 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-57页 |
| 3.1 活动性AS患者Tn细胞的增殖 | 第53-55页 |
| 3.2 活动性AS患者Tn细胞的凋亡 | 第55-56页 |
| 3.3 Tn细胞向CD4~+T细胞亚群Th17细胞诱导分化能力 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| 第二部分 AS患者Treg等CD4~+T细胞亚群比例及MFI | 第59-68页 |
| 1 材料 | 第59-60页 |
| 1.1 标本来源 | 第59页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第59页 |
| 1.3 主要试剂 | 第59-60页 |
| 1.4 主要缓冲液 | 第60页 |
| 2 方法 | 第60-62页 |
| 2.1 PBMCs分离 | 第60页 |
| 2.2 PBMCs中Treg细胞在CD4~+T细胞中比例检测 | 第60-61页 |
| 2.3 分选的CD4~+CD25~(high)Treg细胞中经典CD4~+CD25~+FoxP3~+Treg细胞的比例检测 | 第61页 |
| 2.4 PBMCs中CD4~+CD45RO~+T细胞中Th17/Th1细胞比例检测 | 第61-62页 |
| 2.5 统计分析 | 第62页 |
| 3 结果 | 第62-66页 |
| 3.1 稳定性AS患者和活动性AS患者PBMCs中经典Treg细胞在CD4~+T细胞中的比例 | 第62-63页 |
| 3.2 活动性AS患者经典CD4~+CD25~+FoxP3~+Treg细胞在分选的CD4~+CD25~(high)Treg细胞中的比例 | 第63-64页 |
| 3.3 活动性AS患者PBMCs中CD4~+CD45RO~+记忆T细胞中Th17细胞比例 | 第64-65页 |
| 3.4 活动性与稳定性AS患者PBMCs中CD4~+CD45RO~+记忆T细胞中Th1细胞比例 | 第65-66页 |
| 4 讨论 | 第66-68页 |
| 第三部分 活动性AS患者Treg细胞的增殖抑制功能检测 | 第68-79页 |
| 1 材料 | 第68-70页 |
| 1.1 患者和健康对照者外周血样本 | 第68页 |
| 1.2 实验仪器 | 第68-69页 |
| 1.3 实验主要试剂 | 第69-70页 |
| 1.4 主要缓冲液 | 第70页 |
| 2 方法 | 第70-72页 |
| 3 结果 | 第72-78页 |
| 3.1 Treg细胞增殖抑制功能检测 | 第72-73页 |
| 3.2 Tn细胞与Treg细胞共培养后细胞活性检测 | 第73-75页 |
| 3.3 Tn细胞单独培养或者与Treg细胞共培养上清中TGF-β，Granzyme B与IL-10 检测 | 第75-77页 |
| 3.4 Treg细胞中多种细胞因子表达检测 | 第77-78页 |
| 4 讨论 | 第78-79页 |
| 第四部分 活动性AS患者IL-2信号通路异常影响Treg细胞功能 | 第79-90页 |
| 1 材料 | 第79-81页 |
| 1.1 健康对照者及病人外周血样本 | 第79页 |
| 1.2 实验主要仪器 | 第79-80页 |
| 1.3 主要试剂 | 第80-81页 |
| 1.4 主要缓冲液 | 第81页 |
| 2 实验方法 | 第81-82页 |
| 2.1 Tn细胞与Treg细胞共培养上清液中IL-2 检测 | 第81页 |
| 2.2 Tn细胞IL-2 表达检测 | 第81页 |
| 2.3 Treg细胞STAT5和磷酸化STAT5检测 | 第81-82页 |
| 2.4 统计分析 | 第82页 |
| 3 结果 | 第82-88页 |
| 3.1 Tn细胞与Treg细胞共培养上清液中IL-2 浓度检测 | 第82-83页 |
| 3.2 Tn细胞IL-2 表达检测 | 第83-84页 |
| 3.3 活动性AS患者Treg细胞STAT5磷酸化状态检测 | 第84-88页 |
| 4 讨论 | 第88-90页 |
| 第五部分 活动性AS患者FOXP3基因表观遗传学调控与Treg细胞功能 | 第90-96页 |
| 1 材料 | 第90-92页 |
| 1.1 健康对照者及病人外周血样本 | 第90页 |
| 1.2 实验主要仪器 | 第90-91页 |
| 1.3 实验主要试剂 | 第91-92页 |
| 2 实验方法 | 第92-93页 |
| 2.1 Treg细胞中FoxP3基因上CNS2区域Cp G岛甲基化状态检测 | 第92页 |
| 2.2 统计分析 | 第92-93页 |
| 3 结果 | 第93-94页 |
| 3.1 活动性AS患者Treg细胞Fox P3基因CNS2区CpG岛甲基化水平检测 | 第93-94页 |
| 4 讨论 | 第94-96页 |
| 小结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-107页 |
| 个人简历和研究成果 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
