中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-17页 |
研究现状、成果 | 第13-16页 |
研究目的、方法 | 第16-17页 |
一、雪旺细胞外泌体的分离与鉴定 | 第17-26页 |
1.1 对象和方法 | 第17-22页 |
1.1.1 主要实验设备与试剂 | 第17-18页 |
1.1.2 原代大鼠雪旺细胞的分离、纯化及传代 | 第18-19页 |
1.1.3 雪旺细胞S-100荧光染色鉴定 | 第19-20页 |
1.1.4 利用改良方法提取细胞上清液中外泌体 | 第20页 |
1.1.5 通过扫描电镜负染观察外泌体 | 第20页 |
1.1.6 通过纳米粒径电位分析仪分离外泌体粒径分布 | 第20页 |
1.1.7 WesternBlot | 第20-22页 |
1.2 结果 | 第22-23页 |
1.2.1 雪旺细胞纯度鉴定 | 第22页 |
1.2.2 雪旺细胞外泌体形态及粒径大小分析 | 第22页 |
1.2.3 雪旺细胞外泌体表面标志物检测 | 第22-23页 |
1.3 讨论 | 第23-25页 |
1.4 小结 | 第25-26页 |
二、雪旺细胞外泌体促进神经元轴突再生 | 第26-35页 |
2.1 对象和方法 | 第27-30页 |
2.1.1 主要实验设备与试剂 | 第27-28页 |
2.1.2 外泌体蛋白浓度检测(BCA法) | 第28页 |
2.1.3 皮层神经元的分离与培养 | 第28-29页 |
2.1.4 免疫荧光染色(神经元) | 第29页 |
2.1.5 Biostation动态监测 | 第29页 |
2.1.6 统计学处理 | 第29-30页 |
2.2 结果 | 第30-31页 |
2.2.1 雪旺细胞外泌体蛋白浓度测定 | 第30页 |
2.2.2 建立proBDNF诱导的神经元轴索塌陷及凋亡模型 | 第30页 |
2.2.3 雪旺细胞外泌体促进损伤神经元轴突再生 | 第30-31页 |
2.2.4 动态实时观察轴突生长情况 | 第31页 |
2.3 讨论 | 第31-34页 |
2.4 小结 | 第34-35页 |
三、雪旺细胞外泌体与RhoA/ROCK信号通路的相关性研究 | 第35-42页 |
3.1 对象和方法 | 第35-38页 |
3.1.1 主要实验设备与试剂 | 第35-36页 |
3.1.2 Pulldown分析 | 第36-37页 |
3.1.3 Westernblot检测 | 第37-38页 |
3.2 结果 | 第38-39页 |
3.2.1 RhoA/ROCK信号通路相关蛋白检测 | 第38-39页 |
3.3 讨论 | 第39-41页 |
3.4 小结 | 第41-42页 |
结论 | 第42-43页 |
参考文献 | 第43-57页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第57-59页 |
附录 | 第59-65页 |
综述 脊髓损伤后轴突再生相关机制的研究进展 | 第65-82页 |
综述参考文献 | 第71-82页 |
致谢 | 第82-83页 |
个人简历 | 第83页 |