| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 一、高糖诱导RF/6A糖尿病视网膜病变模型的建立 | 第15-26页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-20页 |
| 1.1.1 实验试剂 | 第15页 |
| 1.1.2 实验器材 | 第15-16页 |
| 1.1.3 实验对象及分组 | 第16页 |
| 1.1.4 ELISA法测定高糖模型下RF/6A中IL-6、TNF-α、MCP-1表达量 | 第16-17页 |
| 1.1.5 qRT-PCR法测定高糖模型下RF/6A中IL-6、TNF-α、MCP-1基因表达情况 | 第17-19页 |
| 1.1.6 硝酸还原酶法检测高糖模型下细胞内一氧化氮水平 | 第19-20页 |
| 1.1.7 ROS+ER双染法观察高糖刺激下RF/6A细胞内ROS表达水平 | 第20页 |
| 1.1.8 流式细胞法检测高糖刺激下RF/6A细胞内ROS表达水平 | 第20页 |
| 1.1.9 统计学方法 | 第20页 |
| 1.2 结果 | 第20-23页 |
| 1.2.1 高糖模型下RF/6A中IL-6、TNF-α、MCP-1表达量 | 第20-21页 |
| 1.2.2 硝酸还原酶法检测高糖模型下细胞内一氧化氮水平 | 第21-22页 |
| 1.2.3 高糖刺激下RF/6A细胞内ROS表达水平 | 第22-23页 |
| 1.3 讨论 | 第23-24页 |
| 1.4 小结 | 第24-26页 |
| 二、高糖刺激对RF/6A细胞转录组学的影响 | 第26-39页 |
| 2.1 实验对象、实验试剂 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 提取细胞总RNA | 第26页 |
| 2.2.2 总RNA的检测 | 第26页 |
| 2.2.3 cDNA文库的构建 | 第26页 |
| 2.2.4 转录组测序 | 第26页 |
| 2.2.5 质量控制 | 第26页 |
| 2.2.6 生物信息分析 | 第26-27页 |
| 2.2.7 炎症、氧化应激、血管新生相关差异基因的验证 | 第27-29页 |
| 2.3 结果 | 第29-36页 |
| 2.3.1 原始数据(Rawreads) | 第29页 |
| 2.3.2 高质量测序数据(cleanreads) | 第29页 |
| 2.3.3 碱基分布图 | 第29-30页 |
| 2.3.4 测序质量评估 | 第30-31页 |
| 2.3.5 测序随机性分析 | 第31-32页 |
| 2.3.6 差异表达基因的筛选 | 第32-33页 |
| 2.3.7 GO统计分类 | 第33-34页 |
| 2.3.8 KEGG富集分析 | 第34-35页 |
| 2.3.9 炎症、氧化应激相关差异基因的验证 | 第35-36页 |
| 2.4 讨论 | 第36-38页 |
| 2.5 小结 | 第38-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第45-46页 |
| 综述 细胞因子与糖尿病性黄斑水肿 | 第46-53页 |
| 综述参考文献 | 第50-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 个人简历 | 第54页 |
