| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩写和符号清单 | 第16-18页 |
| 文献综述 | 第18-25页 |
| 1 胸腺组织的发生及解剖位置 | 第18-19页 |
| 1.1 胸腺组织的发生 | 第18-19页 |
| 1.2 胸腺的解剖学位置 | 第19页 |
| 2 胸腺组织形态学特征 | 第19-21页 |
| 2.1 胸腺组织细胞成分构成 | 第19-20页 |
| 2.1.1 胸腺上皮细胞 | 第19-20页 |
| 2.1.2 胸腺细胞 | 第20页 |
| 2.1.3 胸腺树突状细胞 | 第20页 |
| 2.2 胸腺小体 | 第20-21页 |
| 3 胸腺的功能及微环境 | 第21-22页 |
| 3.1 胸腺的功能 | 第21-22页 |
| 3.2 胸腺微环境 | 第22页 |
| 4 胸腺增龄性变化 | 第22-25页 |
| 4.1 胸腺增龄性变化 | 第22-24页 |
| 4.2 胸腺增龄性退化与凋亡基因的关系 | 第24-25页 |
| 引言 | 第25-26页 |
| 1 材料与方法 | 第26-34页 |
| 1.1 试验器材 | 第26-28页 |
| 1.1.1 试剂与材料 | 第26页 |
| 1.1.2 主要仪器与设备 | 第26-27页 |
| 1.1.3 溶液制备 | 第27-28页 |
| 1.1.4 其他器械与耗材 | 第28页 |
| 1.2 试验动物分组及处理 | 第28-29页 |
| 1.2.1 试验动物选取 | 第28页 |
| 1.2.2 样品的采集与处理 | 第28-29页 |
| 1.3 试验方法 | 第29-34页 |
| 1.3.1 蜡块制作 | 第29页 |
| 1.3.2 HE切片制作程序 | 第29-30页 |
| 1.3.3 免疫组化主要流程 | 第30-31页 |
| 1.3.4 胸腺组织Total mRNA提取 | 第31页 |
| 1.3.5 Total mRNA浓度和完整性检测 | 第31-32页 |
| 1.3.6 cDNA合成 | 第32页 |
| 1.3.7 引物设计与试验体系 | 第32-33页 |
| 1.3.8 数据分析 | 第33-34页 |
| 2 结果 | 第34-51页 |
| 2.1 Total mRNA完整性检测与引物验证 | 第34页 |
| 2.2 胸腺的位置与形状 | 第34-35页 |
| 2.3 胸腺重量、大小及指数增龄性变化 | 第35-38页 |
| 2.3.1 胸腺重量增龄性变化 | 第35页 |
| 2.3.2 胸腺长度增龄性变化 | 第35-36页 |
| 2.3.3 胸腺指数增龄性变化 | 第36页 |
| 2.3.4 胸腺胸/颈段长度比值增龄性变化 | 第36-37页 |
| 2.3.5 胸腺最宽处长度增龄性变化 | 第37-38页 |
| 2.4 胸腺的组织结构观察 | 第38-40页 |
| 2.4.1 胸腺颈段组织结构观察 | 第38-39页 |
| 2.4.2 胸腺胸段组织结构观察 | 第39-40页 |
| 2.5 S100和Caspase-3在胸腺中的分布 | 第40-48页 |
| 2.5.1 S100在胸腺颈段的分布 | 第40-42页 |
| 2.5.2 S100在胸腺胸段的分布 | 第42-44页 |
| 2.5.3 Caspase-3在胸腺颈段的分布 | 第44-46页 |
| 2.5.4 Caspase-3在胸腺胸段的分布 | 第46-48页 |
| 2.6 凋亡基因转录水平检测 | 第48-51页 |
| 2.6.1 胸腺S100mRNA的变化 | 第48页 |
| 2.6.2 胸腺CASP-3mRNA的变化 | 第48-49页 |
| 2.6.3 胸腺CASP-8mRNA的变化 | 第49-50页 |
| 2.6.4 胸腺TP53mRNA的变化 | 第50-51页 |
| 3 讨论 | 第51-54页 |
| 3.1 雌性山羊胸腺大小、重量及结构变化分析 | 第51-52页 |
| 3.2 S100和Caspase-3在雌性山羊胸腺上的分布 | 第52-53页 |
| 3.3 S100、CASP-3、CASP-8和TP53mRNA在胸腺上的转录水平变化 | 第53-54页 |
| 4 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 附录A | 第59-60页 |
| 附录B | 第60-61页 |
