| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-17页 |
| 1.1 根肿菌生理小种分化 | 第11-14页 |
| 1.1.1 十字花科根肿病的发生及发病症状 | 第11-12页 |
| 1.1.2 根肿菌生理小种鉴定方法研究进展 | 第12-14页 |
| 1.1.3 根肿菌生理小种分化型研究进展 | 第14页 |
| 1.2 根肿菌检测技术 | 第14-16页 |
| 1.2.1 植株诱导法 | 第14-15页 |
| 1.2.2 血清学技术 | 第15页 |
| 1.2.3 荧光显微镜技术 | 第15页 |
| 1.2.4 PCR技术 | 第15-16页 |
| 1.3 本研究的目的与内容 | 第16-17页 |
| 第二章 芸薹属根肿菌单孢分离体系构建及沈阳和山东地区生理小种鉴定 | 第17-27页 |
| 2.1 材料方法 | 第17-20页 |
| 2.1.1 试验材料及根肿病菌来源 | 第17页 |
| 2.1.2 主要仪器及耗材 | 第17页 |
| 2.1.3 单孢分离方法 | 第17-18页 |
| 2.1.4 最佳接菌苗龄的选择 | 第18页 |
| 2.1.5 接菌方法优化 | 第18页 |
| 2.1.6 植株培养方法选择 | 第18-19页 |
| 2.1.7 沈阳地区及山东地区根肿菌的Williams生理小种鉴定 | 第19-20页 |
| 2.1.8 沈阳及山东地区根肿菌混生生理小种的抗病鉴定 | 第20页 |
| 2.2 结果分析 | 第20-25页 |
| 2.2.1 根肿菌接菌苗龄的确定 | 第20-21页 |
| 2.2.2 根肿菌单孢接菌方法优化 | 第21-22页 |
| 2.2.3 根肿菌单孢寄主的培养方法优化 | 第22-23页 |
| 2.2.4 沈阳地区根肿菌单孢的生理小种鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.5 山东地区根肿菌单孢的生理小种鉴定 | 第24页 |
| 2.2.6 沈阳及山东地区根肿菌混生生理小种鉴定 | 第24-25页 |
| 2.3 讨论 | 第25-27页 |
| 2.3.1 建立的高效单胞分离技术体系 | 第25页 |
| 2.3.2 我国现有的根肿菌优势单胞可能为4号小种 | 第25-27页 |
| 第三章 根肿菌ITS序列分析及PCR检测 | 第27-40页 |
| 3.1 材料与方法 | 第27-30页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第27页 |
| 3.1.2 主要的试剂 | 第27页 |
| 3.1.3 根肿菌DNA提取 | 第27-29页 |
| 3.1.4 根肿菌DNA的PCR扩增及产物的检测 | 第29-30页 |
| 3.1.5 PCR扩增中根肿菌液模板体积优化 | 第30页 |
| 3.1.6 根肿菌ITS序列分析 | 第30页 |
| 3.2 结果与分析 | 第30-38页 |
| 3.2.1 PCR反应体系不同菌液模板体积检测结果的分析比较 | 第30-31页 |
| 3.2.2 根肿菌不同DNA提取方法PCR结果的分析与比较 | 第31-32页 |
| 3.2.3 根肿菌ITS区域序列分析 | 第32-37页 |
| 3.2.4 不同生理小种根肿菌ITS区域PCR扩增结果分析 | 第37-38页 |
| 3.3 讨论 | 第38-40页 |
| 3.3.1 根肿菌PCR扩增的模板应为菌液或试剂盒提取的DNA | 第38页 |
| 3.3.2 根肿菌各生理小种在rDNA的ITS区域上可能存在差异 | 第38-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 附录 | 第47-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读学位论文期间发表文章 | 第55-56页 |
