| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 1 材料和方法 | 第14-28页 |
| 1.1 抗体 | 第14页 |
| 1.2 实验仪器 | 第14-15页 |
| 1.3 实验材料 | 第15页 |
| 1.4 眼用器械和药品 | 第15-16页 |
| 1.5 试剂盒 | 第16页 |
| 1.6 试剂的配制 | 第16-20页 |
| 1.7 细胞培养 | 第20-21页 |
| 1.7.1 细胞的培养条件 | 第20页 |
| 1.7.2 细胞复苏 | 第20页 |
| 1.7.3 细胞冻存 | 第20-21页 |
| 1.7.4 细胞传代 | 第21页 |
| 1.7.5 细胞计数 | 第21页 |
| 1.8 动物实验 | 第21-22页 |
| 1.8.1 大鼠的饲养 | 第21页 |
| 1.8.2 分离大鼠晶状体上皮细胞 | 第21-22页 |
| 1.8.3 体外大鼠晶状体PCO囊袋模型 | 第22页 |
| 1.9 免疫印迹 | 第22-23页 |
| 1.10 细胞增殖实验 | 第23-24页 |
| 1.11 EdU标记法检测细胞增殖 | 第24页 |
| 1.12 TUNEL凋亡检测 | 第24-25页 |
| 1.13 ATPPullDown | 第25页 |
| 1.14 HE染色 | 第25-26页 |
| 1.14.1 石蜡切片制作 | 第25-26页 |
| 1.14.2 HE染色 | 第26页 |
| 1.15 体内兔PCO模型 | 第26-27页 |
| 1.15.1 实验动物与分组 | 第26页 |
| 1.15.2 体内兔PCO模型 | 第26-27页 |
| 1.15.3 术后观察及评价标准 | 第27页 |
| 1.16 数据统计分析 | 第27-28页 |
| 2 结果 | 第28-44页 |
| 2.1 大鼠晶状体囊袋残留上皮细胞高表达HSP90 | 第28-29页 |
| 2.2 HSP90特异性抑制剂17AAG抑制晶状体上皮细胞系增殖 | 第29-30页 |
| 2.3 HSP90特异性抑制剂17AAG抑制大鼠晶状体囊袋残留上皮细胞增殖 | 第30-34页 |
| 2.3.1 17AAG抑制大鼠晶状体囊袋残留上皮细胞增殖 | 第30-32页 |
| 2.3.2 组织学观察17AAG抑制残留上皮细胞增殖 | 第32-33页 |
| 2.3.3 EdU标记法检测17AAG抑制囊袋残留上皮细胞增殖 | 第33-34页 |
| 2.4 HSP90特异性抑制剂17AAG促进EGFR降解并抑制其下游通路 | 第34-36页 |
| 2.5 17AAG诱导大鼠晶状体PCO囊袋模型中的上皮细胞发生凋亡 | 第36-39页 |
| 2.5.1 17AAG诱导大鼠晶状体PCO囊袋模型残留上皮细胞发生凋亡 | 第36-37页 |
| 2.5.2 17AAG诱导完全覆盖晶体后囊膜的上皮细胞发生凋亡 | 第37-39页 |
| 2.6 HSP90非N端抑制剂PEITC不抑制晶状体上皮细胞增殖 | 第39-41页 |
| 2.7 HSP90特异性抑制剂17AAG延迟兔PCO的发生 | 第41-44页 |
| 2.7.1 成功构建体内兔PCO模型 | 第41-42页 |
| 2.7.2 HSP90特异性抑制剂17AAG延迟兔体内PCO发生 | 第42-44页 |
| 3 讨论 | 第44-48页 |
| 4 结论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 综述 | 第52-62页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
| 攻读学位期间的研究成果及奖励 | 第64-65页 |
