| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 第1章 实验研究 | 第14-49页 |
| 1.1 实验材料 | 第14-15页 |
| 1.1.1 试剂和药物 | 第14页 |
| 1.1.2 仪器和设备 | 第14-15页 |
| 1.2 小鼠来源破骨前体细胞(RAW264.7细胞系)的培养及观察 | 第15-17页 |
| 1.2.1 RAW264.7细胞的基础培养 | 第15-17页 |
| 1.2.2 鼠破骨前体细胞(RAW264.7细胞系)的镜下观察 | 第17页 |
| 1.3 RAW264.7细胞的RANKL诱导培养及观察 | 第17-20页 |
| 1.3.1 材料与方法 | 第17-19页 |
| 1.3.2 结果 | 第19-20页 |
| 1.4 rhBMP2/7和(或)ATRA诱导培养后的细胞增殖检测 | 第20-23页 |
| 1.4.1 实验分组 | 第20-21页 |
| 1.4.2 材料与方法 | 第21页 |
| 1.4.3 统计学方法 | 第21页 |
| 1.4.4 RAW264.7细胞经诱导刺激培养后细胞增殖检测结果 | 第21-23页 |
| 1.5 细胞诱导培养后进行TRAP染色 | 第23-27页 |
| 1.5.1 实验分组 | 第23页 |
| 1.5.2 材料与方法 | 第23页 |
| 1.5.3 统计学方法 | 第23页 |
| 1.5.4 TRAP染色及形态学分析结果 | 第23-27页 |
| 1.6 细胞诱导培养后TRAP活性的测定 | 第27-29页 |
| 1.6.1 材料与方法 | 第27页 |
| 1.6.2 统计学方法 | 第27-28页 |
| 1.6.3 细胞TRAP活性检测结果 | 第28-29页 |
| 1.7 实时荧光定量PCR检测破骨细胞特异性基因表达 | 第29-34页 |
| 1.7.1 材料与方法 | 第29-31页 |
| 1.7.2 统计学方法 | 第31页 |
| 1.7.3 RAW264.7细胞破骨分化特异性基因表达结果 | 第31-34页 |
| 1.8 经RANKL诱导的细胞钙盐吸收功能检测 | 第34-36页 |
| 1.8.1 材料与方法 | 第34页 |
| 1.8.2 统计学分析 | 第34页 |
| 1.8.3 各培养孔钙盐吸收统计分析结果 | 第34-36页 |
| 1.9 讨论 | 第36-40页 |
| 1.10 小结 | 第40页 |
| 参考文献 | 第40-49页 |
| 第2章 综述 在成骨分化中全反式维甲酸作用的研究现状 | 第49-57页 |
| 2.2 前言 | 第49-50页 |
| 2.3 ATRA诱导成骨分化 | 第50页 |
| 2.4 ATRA诱导成骨分化的作用机制 | 第50-51页 |
| 2.5 ATRA与BMP协同促进成骨 | 第51-52页 |
| 2.6 ATRA与BMP协同促进成骨的机制 | 第52页 |
| 2.7 ATRA抑制成骨分化及其机制 | 第52-53页 |
| 2.8 展望 | 第53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 导师简介 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60-61页 |
| 学位论文数据集 | 第61页 |
