| 摘要 | 第4-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分：ROS在低剂量微波辐射诱导ATM和NF-κB活化中的介导作用 | 第16-36页 |
| 1. 材料 | 第16-20页 |
| 1.1 受试细胞 | 第16页 |
| 1.2 试剂、耗材及设备 | 第16-18页 |
| 1.3 辐照条件 | 第18-20页 |
| 2. 方法 | 第20-26页 |
| 2.1 小鼠骨髓基质细胞的制备与培养 | 第20页 |
| 2.2 细胞处理 | 第20-21页 |
| 2.3 小鼠骨髓基质细胞中ROS水平的测定 | 第21页 |
| 2.4 小鼠骨髓基质细胞总RNA的提取 | 第21-22页 |
| 2.5 RT-PCR检测小鼠骨髓基质细胞ATM m RNA水平 | 第22-23页 |
| 2.6 小鼠骨髓基质细胞核蛋白和胞浆蛋白抽提 | 第23-24页 |
| 2.7 western blot检测小鼠骨髓基质细胞NF-κB蛋白水平 | 第24-25页 |
| 2.8 统计分析 | 第25-26页 |
| 3. 结果 | 第26-33页 |
| 3.1 小鼠骨髓基质细胞的传代培养 | 第26-27页 |
| 3.2 褪黑素预处理对低剂量微波诱导小鼠骨髓基质细胞ROS的影响 | 第27-29页 |
| 3.3 ROS在低剂量微波辐射诱导小鼠骨髓基质细胞ATM活化中的介导作用 | 第29-31页 |
| 3.4 ROS在低剂量微波辐射诱导小鼠骨髓基质细胞NF-κB活化中的介导作用 | 第31-33页 |
| 4. 讨论 | 第33-36页 |
| 第二部分：ATM在低剂量微波辐射通过ROS活化NF-κB中的作用 | 第36-51页 |
| 1. 材料 | 第36-37页 |
| 1.1 受试细胞 | 第36页 |
| 1.2 试剂、耗材及设备 | 第36-37页 |
| 1.3 辐照条件 | 第37页 |
| 2. 方法 | 第37-40页 |
| 2.1 小鼠骨髓基质细胞的制备与培养 | 第37页 |
| 2.2 细胞处理 | 第37-38页 |
| 2.3 小鼠骨髓基质细胞ATM m RNA水平的测定 | 第38页 |
| 2.4 小鼠骨髓基质细胞NF-κB蛋白水平的测定 | 第38页 |
| 2.5 小鼠骨髓基质细胞碱性单细胞凝胶电泳实验 | 第38-39页 |
| 2.6 小鼠骨髓基质细胞 γ-H2AX焦点形成免疫荧光检测 | 第39-40页 |
| 2.7 统计分析 | 第40页 |
| 3. 结果 | 第40-50页 |
| 3.1 小鼠骨髓基质细胞的传代培养 | 第40页 |
| 3.2 KU55933预处理对低剂量微波诱导小鼠骨髓基质细胞内ATM mRNA水平的影响 | 第40-41页 |
| 3.3 抑制ATM对低剂量微波辐射诱导的小鼠骨髓基质细胞内NF-κB蛋白水平的影响 | 第41-44页 |
| 3.4 低剂量微波辐射诱导ROS对小鼠骨髓基质细胞DNA的作用 | 第44-50页 |
| 4. 讨论 | 第50-51页 |
| 第三部分：低剂量微波辐射通过激活NF-κB诱导细胞凋亡和改变细胞周期 | 第51-58页 |
| 1. 材料 | 第51页 |
| 1.1 受试细胞 | 第51页 |
| 1.2 试剂、耗材及设备 | 第51页 |
| 1.3 辐照条件 | 第51页 |
| 2. 方法 | 第51-52页 |
| 2.1 小鼠骨髓基质细胞的制备与培养 | 第51页 |
| 2.2 细胞处理 | 第51-52页 |
| 2.3 小鼠骨髓基质细胞中相关蛋白水平的测定 | 第52页 |
| 2.4 统计分析 | 第52页 |
| 3. 结果 | 第52-57页 |
| 3.1 小鼠骨髓基质细胞的传代培养 | 第52页 |
| 3.2 BAY 11-7082预处理对低剂量微波诱导的小鼠骨髓基质细胞内NF-κB蛋白水平的影响 | 第52-57页 |
| 4. 讨论 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 综述 | 第67-74页 |
| 参考文献 | 第71-74页 |
| 研究生期间发表的文章及科研经历 | 第74-75页 |
| 中英文缩写对照表 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
