| 摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一部分 | 第18-36页 |
| 1 材料与方法 | 第18-22页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 1.2 主要试剂 | 第19-21页 |
| 1.2.1 树突状细胞提取、培养及检测试剂 | 第19-20页 |
| 1.2.2 树突状细胞表面单克隆荧光抗体II | 第20页 |
| 1.2.3 主要试剂配制 | 第20-21页 |
| 1.3 主要药物及配制 | 第21-22页 |
| 1.3.1 药物 | 第21页 |
| 1.3.2 药物配制 | 第21-22页 |
| 2 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.1 实验动物模型及分组 | 第22页 |
| 2.1.1 CLP造模 | 第22页 |
| 2.1.2 分组 | 第22页 |
| 2.2 免疫磁珠分选 | 第22-24页 |
| 2.2.1 正常小鼠脾的DC细胞的获取 | 第22-23页 |
| 2.2.2 免疫磁珠分选 | 第23-24页 |
| 2.3 荧光染色 | 第24页 |
| 2.4 流式细胞术 | 第24页 |
| 2.5 ELISA(酶联吸附试验) | 第24-25页 |
| 2.6 DC细胞注入脓毒症小鼠体内后生存率观察 | 第25页 |
| 2.7 统计学处理 | 第25页 |
| 3 结果 | 第25-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 第二部分 | 第36-44页 |
| 1 实验材料和仪器(同上) | 第36页 |
| 2 实验方法 | 第36-38页 |
| 2.1 造模及分组 | 第36页 |
| 2.2 CD4+T细胞的获取 | 第36-37页 |
| 2.3 APS体外分别刺激CD11c~(high)CD45RB~(low)DCs 和 CD11c~(low)CD45RB~(high)DCs | 第37页 |
| 2.4 APS刺激后CD11CHIGH DC对T淋巴细胞的功能性极化(TH1/TH2 漂移)的检测 | 第37-38页 |
| 2.5 细胞回输 | 第38页 |
| 2.6 统计学方法 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 全文总结与结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 中英文缩写语对照表 | 第48-49页 |
| 综述 | 第49-55页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 攻读学位期间发表的文章 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |