| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-13页 |
| 第2章 材料与仪器 | 第13-17页 |
| 2.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.2 实验试剂 | 第13-16页 |
| 2.2.1 主要购置试剂 | 第13-14页 |
| 2.2.2 主要试剂的配制 | 第14-16页 |
| 2.3 实验仪器 | 第16-17页 |
| 第3章 研究大鼠蛛网膜下腔出血后Cx43在大脑中动脉分支中的表达变化实验方法 | 第17-27页 |
| 3.1 大鼠蛛网膜下腔出血模型的构建方法 | 第17页 |
| 3.2 腺病毒给药方法、途径及剂量 | 第17页 |
| 3.3 大鼠的大脑中动脉分支微血管标本的灌注固定 | 第17-18页 |
| 3.4 HE染色观察蛛网膜下腔出血模型 | 第18-20页 |
| 3.4.1 石蜡切片的制作 | 第18-19页 |
| 3.4.2 HE染色法（苏木素－伊红染色） | 第19-20页 |
| 3.5 免疫组化观察大脑中动脉分支微血管Cx43的表达 | 第20-21页 |
| 3.6 Western bolt检测大脑中动脉分支微血管的Cx43表达水平变化 | 第21-24页 |
| 3.6.1 Western bolt检测腺病毒对Cx43的沉默效率 | 第21-24页 |
| 3.6.2 Western bolt检测SAH后大脑中动脉分支微血管Cx43的表达变化 | 第24页 |
| 3.6.3 Western bolt检测腺病毒预处理后SAH的大脑中动脉分支微血管Cx43的表达变化 | 第24页 |
| 3.6.4 图像分析与数据统计分析 | 第24页 |
| 3.7 体内实验的分组 | 第24-25页 |
| 3.8 活体荧光显微镜测定 | 第25-26页 |
| 3.8.1 活体荧光显微镜前期步骤 | 第25-26页 |
| 3.8.2 图像测定采集方法 | 第26页 |
| 3.9 数据统计分析 | 第26-27页 |
| 第4章 实验结果 | 第27-35页 |
| 4.1 HE染色观察大脑中动脉分支微血管的形态变化 | 第27页 |
| 4.2 Western bolt检测腺病毒对Cx43的沉默效率检测结果 | 第27-30页 |
| 4.2.1 Western bolt检测SAH和病毒预处理组大脑中动脉分支微血管Cx43的表达变化 | 第29-30页 |
| 4.4 免疫组化的结果 | 第30-31页 |
| 4.5 活体荧光显微镜结果 | 第31-35页 |
| 4.5.1 血管痉挛数量 | 第31-32页 |
| 4.5.2 血管痉挛程度 | 第32-33页 |
| 4.5.3 不同直径的微动脉收缩程度 | 第33-35页 |
| 第5章 讨论 | 第35-41页 |
| 5.1 SAH、DIND与CVS | 第35-36页 |
| 5.2 脑微循环与DIND | 第36-37页 |
| 5.3 GJ与脑微循环 | 第37-38页 |
| 5.4 缝隙连接蛋白Cx43与微血管收缩机制的探讨 | 第38-39页 |
| 5.5 本实验研究结果的讨论 | 第39-41页 |
| 第6章 结论与展望 | 第41-42页 |
| 6.1 结论 | 第41页 |
| 6.2 展望 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 附图 | 第47-49页 |
| 综述 | 第49-57页 |
| 参考文献 | 第55-57页 |
