中文摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-12页 |
缩略语/符号说明 | 第15-17页 |
前言 | 第17-20页 |
研究现状、成果 | 第17-19页 |
研究目的、方法 | 第19-20页 |
对象与方法 | 第20-39页 |
1.1 实验动物和饲养 | 第20页 |
1.1.1 实验动物 | 第20页 |
1.1.2 动物饲养 | 第20页 |
1.2 主要试剂和仪器 | 第20-22页 |
1.2.1 主要试剂 | 第20-21页 |
1.2.2 主要仪器 | 第21-22页 |
1.3 实验方法 | 第22-38页 |
1.3.1 技术路线图及实验分组示意图 | 第22-25页 |
1.3.2 动物模型的建立、分组、取材及生化指标检测 | 第25-27页 |
1.3.3 ELISA法检测大鼠血清MCP-1、VCAM-1水平 | 第27-28页 |
1.3.4 RT-PCR技术检测大鼠肾组织MCP-1、VCAM-1 mRNA的表达 | 第28-32页 |
1.3.5 Western Blotting技术检测大鼠肾组织MCP-1、VCAM-1蛋白的表达 | 第32-37页 |
1.3.6 免疫组化技术检测大鼠肾组织MCP-1、VCAM-1的表达 | 第37-38页 |
1.4 统计学方法 | 第38-39页 |
结果 | 第39-82页 |
2.1 动物模型 | 第39-40页 |
2.1.1 实验动物一般情况 | 第39页 |
2.1.2 成模情况 | 第39-40页 |
2.2 预防组实验结果 | 第40-61页 |
2.2.1 体重变化 | 第40-41页 |
2.2.2 血糖变化 | 第41-42页 |
2.2.3 KW/BW水平 | 第42-43页 |
2.2.4 血脂水平 | 第43-44页 |
2.2.5 肝功能情况 | 第44-45页 |
2.2.6 肾功能情况 | 第45页 |
2.2.7 血常规计数 | 第45-47页 |
2.2.8 24小时尿微量白蛋白(UMA)水平 | 第47-49页 |
2.2.9 电镜观察预防组大鼠肾小球滤过膜变化 | 第49-50页 |
2.2.10 ELISA法检测预防组大鼠血清MCP-1、VCAM-1水平 | 第50-51页 |
2.2.11 RT-PCR法检测预防组大鼠肾组织中MCP-1、VCAM-1mRNA的表达 | 第51-55页 |
2.2.12 Western Blotting法检测预防组大鼠肾组织MCP-1、VCAM-1蛋白的表达 | 第55-57页 |
2.2.13 免疫组化法检测预防组大鼠肾脏MCP-1、VCAM-1的表达 | 第57-61页 |
2.3 治疗组实验结果 | 第61-82页 |
2.3.1 体重变化 | 第61-62页 |
2.3.2 血糖变化 | 第62-63页 |
2.3.3 KW/BW水平 | 第63-64页 |
2.3.4 血脂水平 | 第64页 |
2.3.5 肝功能情况 | 第64-65页 |
2.3.6 肾功能情况 | 第65-66页 |
2.3.7 血常规计数 | 第66-68页 |
2.3.8 24小时微量白蛋白尿(UMA)水平 | 第68-70页 |
2.3.9 电镜观察治疗组大鼠肾小球滤过膜变化 | 第70-71页 |
2.3.10 治疗组大鼠血清MCP-1、VCAM-1水平 | 第71-72页 |
2.3.11 RT-PCR法检测治疗组大鼠肾组织中MCP-1、VCAM-1mRNA的表达 | 第72-75页 |
2.3.12 Western Blotting法检测治疗组大鼠肾组织MCP-1、VCAM-1蛋白的表达 | 第75-77页 |
2.3.13 免疫组化法检测治疗组大鼠肾脏MCP-1、VCAM-1的表达 | 第77-82页 |
讨论 | 第82-91页 |
3.1 肾小球滤过膜与糖尿病肾病 | 第83-84页 |
3.2 肾小球内皮细胞与糖尿病肾病 | 第84-85页 |
3.3 MCP-1与糖尿病肾病 | 第85-86页 |
3.4 VCAM-1与糖尿病肾病 | 第86-87页 |
3.5 雷公藤多苷在糖尿病肾病发生发展中的作用 | 第87-89页 |
3.6 小檗碱在糖尿病肾病发生发展中的作用 | 第89-91页 |
结论 | 第91-92页 |
参考文献 | 第92-97页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第97-98页 |
附录 | 第98-102页 |
综述 肾小球内皮细胞功能及相关因子在糖尿病肾病中的变化 | 第102-113页 |
综述参考文献 | 第107-113页 |
致谢 | 第113页 |