| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第7-10页 |
| 第一部分 慢性乙型肝炎患者血清PI4KA的表达与乙肝病毒载量的相关性研究 | 第10-18页 |
| 第1章 实验材料 | 第11-12页 |
| 1.1 主要仪器和设备 | 第11页 |
| 1.2 主要试剂和器材 | 第11-12页 |
| 第2章 实验方法 | 第12-14页 |
| 2.1 研究对象 | 第12页 |
| 2.2 血清中HBVDNA载量的测定 | 第12页 |
| 2.3 实验分组 | 第12页 |
| 2.4 血清PI4KA表达水平的测定 | 第12-13页 |
| 2.5 统计学分析 | 第13-14页 |
| 第3章 结果 | 第14-16页 |
| 3.1 不同组间血清PI4KA表达水平情况 | 第14-15页 |
| 3.2 PI4KA的表达水平与HBV DNA的相关性分析 | 第15-16页 |
| 第4章 讨论 | 第16-18页 |
| 第二部分 HBV对肝癌系HepG2和HepG2.2.15中PI4KA基因表达的影响 | 第18-39页 |
| 实验一 HepG2和HepG2.2.15细胞的培养和观察 | 第19-27页 |
| 第1章 实验材料 | 第19-21页 |
| 1.1 细胞株 | 第19页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第19页 |
| 1.3 主要试剂和器材 | 第19-20页 |
| 1.4 主要试剂的配制及保存 | 第20-21页 |
| 第2章 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.1 HepG2和HepG2.2.15细胞的复苏 | 第21页 |
| 2.2 HepG2和HepG2.2.15细胞的换液 | 第21页 |
| 2.3 HepG2和HepG2.2.15细胞的传代 | 第21-22页 |
| 2.4 HepG2和HepG2.2.15细胞的冻存 | 第22页 |
| 2.5 HepG2和HepG2.2.15细胞的计数 | 第22-23页 |
| 2.6 HepG2和HepG2.2.15细胞活率的测定 | 第23-24页 |
| 第3章 结果 | 第24-27页 |
| 实验二 HBV对HepG2和HepG2.2.15中PI4KA表达的影响 | 第27-39页 |
| 第1章 实验材料 | 第27-28页 |
| 1.1 细胞株 | 第27页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第27页 |
| 1.3 主要试剂和器材 | 第27-28页 |
| 第2章 实验方法 | 第28-34页 |
| 2.1 HepG2和HepG2.2.15细胞总RNA的提取 | 第28-29页 |
| 2.2 HepG2和HepG2.2.15细胞总RNA的测定 | 第29-30页 |
| 2.3 逆转录制备cDNA | 第30页 |
| 2.4 Real-time PCR检测HepG2和HepG2.2.15细胞中PI4KA mRNA的表达 | 第30-31页 |
| 2.5 ELISA法检测HepG2和HepG2.2.15细胞培养上清液中PI4KA的含量 | 第31-34页 |
| 第3章 结果 | 第34-37页 |
| 3.1 分光光度仪检测RNA浓度 | 第34页 |
| 3.2 琼脂糖凝胶电泳对RNA的鉴定 | 第34页 |
| 3.3 实时荧光定量PCR溶解曲线和反应曲线 | 第34-35页 |
| 3.4 HBV对PI4KA mRNA表达的影响 | 第35页 |
| 3.5 HBV对细胞培养上清液中PI4KA含量的影响 | 第35-37页 |
| 第4章 讨论 | 第37-39页 |
| 第三部分 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 综述 | 第44-54页 |
| 综述参考文献 | 第50-54页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第54-55页 |
| 中英文缩略词表 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
