英文缩略词表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-12页 |
英文摘要 | 第12-16页 |
1 前言 | 第17-18页 |
2 实验材料 | 第18-22页 |
2.1 细胞株、菌株 | 第18页 |
2.2 实验动物 | 第18页 |
2.3 质粒 | 第18页 |
2.4 抗体 | 第18-19页 |
2.5 主要试剂 | 第19-20页 |
2.6 主要试剂溶液的配制 | 第20-21页 |
2.7 主要仪器与设备 | 第21-22页 |
3 实验方法 | 第22-34页 |
3.1 RbCl法制备TOP10感受态细胞及质粒的转化 | 第22-23页 |
3.2 细胞培养与转染 | 第23-24页 |
3.3 模型的建立 | 第24-25页 |
3.4 蛋白免疫印迹(Western blotting, WB) | 第25-29页 |
3.5 脑组织免疫荧光 | 第29-30页 |
3.6 细胞活力检测 | 第30页 |
3.7 流式细胞术 | 第30-31页 |
3.8 免疫沉淀(IP) | 第31-32页 |
3.9 细胞线粒体分离 | 第32-33页 |
3.10 RTN1-CshRNA的合成及侧脑注射慢病毒 | 第33页 |
3.11 大鼠脑梗死区域面积的计算 | 第33-34页 |
4 结果 | 第34-52页 |
4.1 RTN1-C在大鼠脑缺血再灌注模型中表达上调 | 第34-37页 |
4.2 在脑缺血再灌注模型中RTN1-C促进细胞凋亡 | 第37-40页 |
4.3 在OGD/R模型中,RTN1-C可以诱导内质网应激相关的凋亡 | 第40-43页 |
4.4 在OGD/R模型中,RTN1-C可以诱导线粒体相关的凋亡 | 第43-49页 |
4.5 敲低RTN1-C可以减少大鼠MACO模型中神经细胞的凋亡 | 第49-52页 |
5 讨论 | 第52-54页 |
6 结论 | 第54页 |
7 创新点 | 第54页 |
8 参考文献 | 第54-60页 |
附录 | 第60-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
综述 | 第63-73页 |
参考文献 | 第69-73页 |