| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 文献回顾 | 第14-25页 |
| 1 材料 | 第25-27页 |
| 1.1 实验动物 | 第25页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第25-27页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第27页 |
| 2 实验方法 | 第27-39页 |
| 2.1 实验分组 | 第27-28页 |
| 2.2 Morris水迷宫实验 | 第28-29页 |
| 2.3 小鼠脑组织准备 | 第29-30页 |
| 2.4 免疫组织化学和荧光染色实验 | 第30页 |
| 2.5 脑内Aβ淀粉样斑块沉积的量化分析 | 第30-31页 |
| 2.6 生化检测样本的制备 | 第31-32页 |
| 2.7 使用 ELISA 方法检测可溶性、不可溶 Aβ和 Aβ Oligomer 含量 | 第32-37页 |
| 2.8 使用 Western 方法检测 Aβ代谢及 Tau 蛋白磷酸化相关蛋白的表达 | 第37-39页 |
| 3 实验结果 | 第39-53页 |
| 3.1 SP600125 可显著改善APP/PS1 小鼠空间学习和记忆功能损害 | 第39-41页 |
| 3.2 SP600125 可显著降低APP/PS1 小鼠脑内磷酸化JNK（p-JNK）水平 | 第41-43页 |
| 3.3 SP600125 可显著降低APP/PS1 小鼠脑内Aβ含量及斑块沉积 | 第43-47页 |
| 3.4 SP600125 可调控APP/PS1 小鼠脑内APP的代谢 | 第47-49页 |
| 3.5 SP600125 可调控APP/PS1 小鼠脑内APP代谢相关酶的表达 | 第49-51页 |
| 3.6 SP600125 可显著降低APP/PS1 小鼠脑内Tau蛋白的磷酸化 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-56页 |
| 小结 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-75页 |
| 个人简历和研究成果 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
