| 英文缩略词表 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第13-15页 |
| 2 材料和方法 | 第15-20页 |
| 2.1 主要试剂 | 第15-16页 |
| 2.2 仪器设备 | 第16-17页 |
| 2.3 动物模型和标本制备 | 第17页 |
| 2.3.1 实验动物和饲养情况 | 第17页 |
| 2.3.2 取材和标本制备 | 第17页 |
| 2.4 方法 | 第17-20页 |
| 2.4.1 血清脂质含量检测 | 第17页 |
| 2.4.2 HE染色 | 第17-18页 |
| 2.4.3 尼氏染色 | 第18页 |
| 2.4.4 小鼠脑海马组织电镜样本制备 | 第18-19页 |
| 2.4.5 免疫组织化学SP法染色程序 | 第19页 |
| 2.4.6 计算机图像分析 | 第19-20页 |
| 2.5 数据处理 | 第20页 |
| 3 结果 | 第20-29页 |
| 3.1 血清血脂生化指标检测结果 | 第20-22页 |
| 3.2 HE染色结果 | 第22-23页 |
| 3.3 尼氏染色结果 | 第23页 |
| 3.4 电镜观察 | 第23-25页 |
| 3.4.1 海马CA3区神经元结构变化 | 第23-24页 |
| 3.4.2 海马CA3区神经纤维髓鞘结构变化 | 第24-25页 |
| 3.4.3 海马CA3区突触结构变化 | 第25页 |
| 3.5 免疫组化染色结果 | 第25-27页 |
| 3.5.1 MAP-2免疫组化染色结果 | 第25-26页 |
| 3.5.2 磷酸化Tau蛋白免疫组化染色结果 | 第26-27页 |
| 3.6 计算机图像分析结果 | 第27-29页 |
| 4 讨论 | 第29-38页 |
| 4.1 血脂代谢异常与神经退行性疾病的关系 | 第29-30页 |
| 4.2 ApoE-KO小鼠海马神经元结构的变化及意义 | 第30-32页 |
| 4.3 ApoE-KO小鼠海马神经元微管相关蛋白-2表达变化及意义…… | 第32-34页 |
| 4.4 ApoE-KO小鼠海马神经元中Tau蛋白表达变化及意义 | 第34-35页 |
| 4.5 ApoE-KO小鼠海马神经元中MAP-2和Tau蛋白表达的内在关联及意义 | 第35-38页 |
| 5 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-48页 |
| 附录 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 综述 | 第50-63页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
