| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 第一章 臭氧应激建立哮喘大鼠模型 | 第14-25页 |
| 1.1 材料和方法 | 第16-20页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.1.2 实验主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.3 实验主要仪器 | 第17页 |
| 1.1.4 实验动物分组 | 第17-18页 |
| 1.1.5 取材 | 第18页 |
| 1.1.6 气道反应性测定 | 第18页 |
| 1.1.7 支气管肺泡灌洗液中细胞计数,分类 | 第18-19页 |
| 1.1.8 支气管肺泡灌洗液总蛋白水平测量 | 第19页 |
| 1.1.9 肺、支气管病理变化 | 第19页 |
| 1.1.10 血浆IgE抗体水平检测 | 第19-20页 |
| 1.1.11 统计学分析 | 第20页 |
| 1.2 结果 | 第20-21页 |
| 1.2.1 肺组织病理变化 | 第20页 |
| 1.2.2 气道反应性改变 | 第20页 |
| 1.2.3 支气管肺泡灌洗液细胞计数、分类,总蛋白含量的变化 | 第20-21页 |
| 1.2.4 血浆中IgE水平改变 | 第21页 |
| 1.3 讨论 | 第21-23页 |
| 1.4 附图表 | 第23-25页 |
| 第二章 臭氧应激对气道粘膜细胞群落的影响 | 第25-35页 |
| 2.1 材料和方法 | 第26-28页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.3 实验主要仪器 | 第27页 |
| 2.1.4 实验分组与模型制备 | 第27页 |
| 2.1.5 扫描电镜样本制备与观察 | 第27-28页 |
| 2.1.6 统计学分析 | 第28页 |
| 2.2 结果 | 第28-29页 |
| 2.2.1 大鼠气道粘膜纤毛细胞在臭氧应激状态下的变化 | 第28页 |
| 2.2.2 大鼠气道粘膜Clara细胞在臭氧应激状态下的变化 | 第28-29页 |
| 2.2.3 大鼠气道粘膜杯状细胞在臭氧应激状态下的变化 | 第29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-31页 |
| 2.4 附图表 | 第31-35页 |
| 第三章 臭氧应激对大鼠呼吸道粘蛋白表达谱的影响 | 第35-47页 |
| 3.1 材料和方法 | 第36-40页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第36页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第36-37页 |
| 3.1.3 实验主要仪器 | 第37页 |
| 3.1.4 实验分组和模型制备 | 第37页 |
| 3.1.5 提组织总RNA | 第37-38页 |
| 3.1.6 mRNA逆转录 | 第38-39页 |
| 3.1.7 PCR反应 | 第39页 |
| 3.1.8 统计学分析 | 第39-40页 |
| 3.2 结果 | 第40-41页 |
| 3.2.1 大鼠气道粘蛋白基因表达量在臭氧应激状态下的改变 | 第40页 |
| 3.2.2 PAS染色结果 | 第40页 |
| 3.2.3 臭氧应激下气道粘膜细胞群落与粘蛋白表达谱改变的相关性 | 第40-41页 |
| 3.3 讨论 | 第41-43页 |
| 3.4 附图表 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 综述 | 第54-64页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 攻读学位期间主要研究成果 | 第64-65页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
