| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 文献综述 | 第10-21页 |
| 第一章 小反刍兽疫及热休克蛋白研究进展 | 第10-21页 |
| 1.1 小反刍兽疫(PPR)简述 | 第10-11页 |
| 1.2 PPRV的一般生物学特性 | 第11-15页 |
| 1.2.1 PPRV的分类 | 第11-12页 |
| 1.2.2 PPRV理化特性 | 第12页 |
| 1.2.3 PPRV基因组结构及主要编码蛋白 | 第12-14页 |
| 1.2.4 小反刍兽疫病毒的培养及复制 | 第14-15页 |
| 1.3 热休克蛋白的研究进展 | 第15-19页 |
| 1.3.1 HSP90家族 | 第15-16页 |
| 1.3.2 HSP70家族 | 第16-18页 |
| 1.3.3 HSP60和小HSP家族 | 第18-19页 |
| 1.4 热休克蛋白与病毒感染的机制 | 第19-20页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第20-21页 |
| 试验研究 | 第21-42页 |
| 第二章 山羊成纤维细胞感染PPRV后热休克蛋白表达的变化 | 第21-34页 |
| 2.1 材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 毒株及抗体 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.1.4 相关试剂的配制 | 第23页 |
| 2.2 方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第23页 |
| 2.2.2 病毒的增殖 | 第23页 |
| 2.2.3 PPRV滴度测定参照本实验室方法。 | 第23页 |
| 2.2.4 PPRV病毒感染GFF细胞的病变观察 | 第23-24页 |
| 2.2.5 GFF的接毒及样品收集 | 第24页 |
| 2.2.6 定量检测热休克蛋白及 PPRV m RNA 水平的表达情况 | 第24-25页 |
| 2.2.7 Westernblot检测HSP70、HSP90、HSP32及PPRV的蛋白含量变化 | 第25-26页 |
| 2.2.8 病毒蛋白转染GFF细胞 | 第26页 |
| 2.3 结果 | 第26-32页 |
| 2.3.1 PPRVTCID50的检测 | 第26-27页 |
| 2.3.2 PPRV感染GFF后不同时间段细胞的病变情况 | 第27-28页 |
| 2.3.3 PPRV感染GFF细胞不同时间段HSP90、HSP70、HSP32mRNA含量变化 | 第28-29页 |
| 2.3.4 PPRV感染Vero细胞不同时间段HSP90、HSP70、HSP32mRNA含量变化 | 第29页 |
| 2.3.5 PPRV感染GFF不同时间段HSP90、HSP70、HSP32蛋白的含量变化 | 第29-30页 |
| 2.3.6 PPRV感染Vero不同时间段HSP90、HSP70、HSP32蛋白的含量变化 | 第30-31页 |
| 2.3.7 PPRV病毒蛋白过表达对HSP70表达影响 | 第31-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-33页 |
| 2.5 小结 | 第33-34页 |
| 第三章 GFF细胞中HSP70变化对PPRV增殖的影响 | 第34-42页 |
| 3.1 材料 | 第34页 |
| 3.1.1 毒株及细胞 | 第34页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第34页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第34页 |
| 3.1.4 主要溶液配制 | 第34页 |
| 3.2 方法 | 第34-35页 |
| 3.3 结果 | 第35-41页 |
| 3.3.1 HSP70基因过表达及干扰慢病毒载体的构建 | 第36-37页 |
| 3.3.2 包装过表达HSP70的慢病毒鉴定 | 第37-38页 |
| 3.3.3 细胞中慢病毒转染HSP70对PPRV增殖影响 | 第38-39页 |
| 3.3.4 HSP70特异性抑制剂槲皮素对PPRV增殖的影响 | 第39-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41页 |
| 3.5 小结 | 第41-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-51页 |
| 缩略词表 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 个人简介 | 第53页 |
