| 中文摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 1 前言 | 第17-25页 |
| 1.1 表观遗传学 | 第17-18页 |
| 1.1.1 表观遗传学概述 | 第17页 |
| 1.1.2 表观遗传学研究内容 | 第17-18页 |
| 1.2 DNA甲基化 | 第18-19页 |
| 1.3 RNA甲基化 | 第19-20页 |
| 1.4 HEN1甲基转移酶蛋白 | 第20-21页 |
| 1.5 光电化学传感器 | 第21-22页 |
| 1.6 本课题的提出以及主要研究内容 | 第22-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-43页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第25-29页 |
| 2.1.1 仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.2 试剂 | 第26-28页 |
| 2.1.3 实验中主要缓冲溶液的配制 | 第28-29页 |
| 2.2 试验方法 | 第29-43页 |
| 2.2.1 基于g-C_3N_4-CdSQDs光电化学传感器检测RNA甲基化 | 第29-32页 |
| 2.2.1.1 g-C_3N_4的制备及表征 | 第29页 |
| 2.2.1.2 CdSQDs的制备 | 第29-30页 |
| 2.2.1.3 纳米CuO的制备以及氨基化 | 第30页 |
| 2.2.1.4 ITO电极预处理 | 第30页 |
| 2.2.1.5 PEC生物传感器的制备 | 第30-31页 |
| 2.2.1.6 光电化学信号检测 | 第31-32页 |
| 2.2.1.7 m6A甲基的RNAPEC生物传感器选择性检测 | 第32页 |
| 2.2.1.8 m6A甲基的RNAPEC生物传感器稳定性检测 | 第32页 |
| 2.2.1.9 健康人与手术前后癌症患者血清中m6A甲基的RNA表达量的检测 | 第32页 |
| 2.2.2 基于g-C_3N_4-Ru@SiO_2光电化学传感器检测m6A | 第32-35页 |
| 2.2.2.1 羧基化的g-C_3N_4的制备 | 第32-33页 |
| 2.2.2.2 亲和素-Ru@SiO_2的制备 | 第33页 |
| 2.2.2.3 ITO电极预处理 | 第33页 |
| 2.2.2.4 PEC传感器的制备 | 第33-34页 |
| 2.2.2.5 光电化学信号检测 | 第34页 |
| 2.2.2.6 PEC生物传感器选择性检测 | 第34页 |
| 2.2.2.7 PEC生物传感器稳定性检测 | 第34页 |
| 2.2.2.8 癌症患者血清中m6A表达量的检测 | 第34-35页 |
| 2.2.3 基于BiVO_4-TiO_2光电化学传感器检测m6A | 第35-38页 |
| 2.2.3.1 BiVO_4@TiO_2异质结的制备 | 第35页 |
| 2.2.3.2 MoS_2-Au纳米片的制备 | 第35页 |
| 2.2.3.3 SiO_2的制备 | 第35-36页 |
| 2.2.3.4 Avidin-SiO_2-ssDNA@Ag的制备 | 第36页 |
| 2.2.3.5 ITO电极预处理 | 第36页 |
| 2.2.3.6 PEC生物传感器的制备 | 第36-37页 |
| 2.2.3.7 光电化学信号检测 | 第37页 |
| 2.2.3.8 特异性检测 | 第37页 |
| 2.2.3.9 实际样品中m6A含量检测 | 第37-38页 |
| 2.2.4 基于过氧化氢模拟酶PtCuNFs光电化学传感器检测HENMT | 第38-40页 |
| 2.2.4.1 石墨烯量子点的制备 | 第38页 |
| 2.2.4.2 磷掺杂的棒状氮化碳(P-RCN) | 第38页 |
| 2.2.4.3 探针DNA的固定和杂交 | 第38-39页 |
| 2.2.4.4 Poly(U)聚合酶作用的链延伸以及PtCu@DNA的固定 | 第39页 |
| 2.2.4.5 RNA甲基化、HENMT1活性和抑制剂的检测 | 第39页 |
| 2.2.4.6 光电化学检测 | 第39-40页 |
| 2.2.4.7 PEC生物传感器的选择性 | 第40页 |
| 2.2.4.8 PEC生物传感器稳定性检测 | 第40页 |
| 2.2.5 基于g-C_3N_4-CdSQDs光电化学传感器检测M.SssI甲基转移酶 | 第40-43页 |
| 2.2.5.1 g-C_3N_4的制备及表征 | 第40-41页 |
| 2.2.5.2 CdSQDs的制备 | 第41页 |
| 2.2.5.3 PEC生物传感器的构建 | 第41-42页 |
| 2.2.5.4 光电化学信号检测 | 第42页 |
| 2.2.5.8 PEC生物传感器选择性检测 | 第42页 |
| 2.2.5.9 农药对M.SssI活性的影响 | 第42-43页 |
| 3.结果与分析 | 第43-79页 |
| 3.1 基于C_3N_4-CdSQDs光电化学传感器检测RNA甲基化 | 第43-50页 |
| 3.1.1 实验原理 | 第43-44页 |
| 3.1.2 材料的表征 | 第44-45页 |
| 3.1.3 不同修饰电极的电化学及光电化学行为 | 第45-47页 |
| 3.1.4 条件优化 | 第47-48页 |
| 3.1.5 光电化学传感器的检测性能 | 第48-49页 |
| 3.1.6 健康人与手术前后癌症患者血清中m6A甲基化的RNA表达量的检测 | 第49-50页 |
| 3.2 基于C_3N_4-Ru@SiO_2光电化学传感器检测m6A | 第50-58页 |
| 3.2.1 实验机理 | 第50-52页 |
| 3.2.2 材料的表征 | 第52-53页 |
| 3.2.3 不同修饰电极的电化学及光电化学行为 | 第53-55页 |
| 3.2.4 条件优化 | 第55-56页 |
| 3.2.5 PEC传感器的检测性能 | 第56-58页 |
| 3.2.6 癌症患者血清中m6A表达量的检测 | 第58页 |
| 3.3 基于BiVO_4-TiO_2光电化学传感器检测m6A | 第58-66页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第58-59页 |
| 3.3.2 材料的表征 | 第59-60页 |
| 3.3.3 实验的可行性分析 | 第60-62页 |
| 3.3.4 试验条件的优化 | 第62-63页 |
| 3.3.5 传感器性能研究 | 第63-65页 |
| 3.3.6 实际样品中m6A含量检测 | 第65-66页 |
| 3.4 Poly(U)聚合酶作用的链延伸以及PtCu@DNA的固定 | 第66-73页 |
| 3.4.1 实验原理 | 第66-67页 |
| 3.4.2 材料的表征 | 第67-68页 |
| 3.4.3 不同修饰电极的交流阻抗图 | 第68-69页 |
| 3.4.4 实验的可行性分析 | 第69-70页 |
| 3.4.5 实验条件的优化 | 第70-71页 |
| 3.4.6 HENMT1活性的检测 | 第71-72页 |
| 3.4.7 毒死蜱对HENMT1活性的抑制作用 | 第72-73页 |
| 3.5 基于g-C_3N_4-CdSQDs光电化学传感器检测M.SssI甲基转移酶 | 第73-79页 |
| 3.5.1 实验原理 | 第73-74页 |
| 3.5.2 材料以及传感器的表征 | 第74-76页 |
| 3.5.3 实验条件的优化 | 第76页 |
| 3.5.4 M.SssI甲基转移酶活性的检测 | 第76-77页 |
| 3.5.5 农药对M.SssI的影响 | 第77-79页 |
| 4 讨论 | 第79-84页 |
| 4.1 基于g-C_3N_4-CdSQDs光电化学传感器检测M.SssI甲基转移酶 | 第79页 |
| 4.2 C_3N_4-CdSQDs光电化学传感器检测RNA甲基化 | 第79-81页 |
| 4.3 基于C_3N_4-Ru@SiO_2光电化学传感器检测m6A | 第81页 |
| 4.4 基于BiVO_4-TiO_2PEC生物传感器检测m6A | 第81-82页 |
| 4.5 基于过氧化氢模拟酶PtCuNFs光电化学传感器检测HENMT | 第82-84页 |
| 5.结论 | 第84-86页 |
| 5.1 基于g-C_3N_4-CdSQDs光电化学传感器检测M.SssI甲基转移酶 | 第84页 |
| 5.2 g-C_3N_4-CdSQDs异质结光电化学传感器检测RNA甲基化 | 第84页 |
| 5.3 基于C_3N_4-Ru@SiO_2光电化学传感器检测m6A | 第84页 |
| 5.4 基于BiVO_4-TiO_2光电化学传感器检测m6A | 第84-85页 |
| 5.5 基于过氧化氢模拟酶PtCuNFs光电化学传感器检测HEN1RNA甲基转移酶 | 第85-86页 |
| 6 创新之处 | 第86-87页 |
| 7 参考文献 | 第87-98页 |
| 8 致谢 | 第98-100页 |
| 9 攻读学位期间发表论文情况 | 第100-101页 |
