| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-26页 |
| 1.1 前言 | 第9页 |
| 1.2 以VEGF/VEGFR为靶点的抗肿瘤药物 | 第9-12页 |
| 1.2.1 VEGF/VEGFR的结构和生理功能 | 第9-10页 |
| 1.2.2 以VEGF/VEGFR为靶标的抗肿瘤药物的研发进展 | 第10-11页 |
| 1.2.3 以VEGF/VEGFR为靶标的抗肿瘤药物存在的问题 | 第11-12页 |
| 1.3 聚合物胶束 | 第12-21页 |
| 1.3.1 材料的选择 | 第12-13页 |
| 1.3.2 聚合物载药胶束的制备方法 | 第13-14页 |
| 1.3.3 药物从聚合物胶束的释放 | 第14-15页 |
| 1.3.4 聚合物胶束的靶向策略 | 第15-21页 |
| 1.4 羧甲基壳聚糖 | 第21-24页 |
| 1.4.1 不同类型CMCS的合成 | 第21页 |
| 1.4.2 CMCS的生理作用 | 第21-22页 |
| 1.4.3 CMCS基材料在药物制剂中的应用 | 第22-24页 |
| 1.5 本课题的研究目的和主要研究内容 | 第24-25页 |
| 1.6 本文的创新点 | 第25-26页 |
| 第2章 羧甲基壳聚糖接枝聚己内酯的制备及其自组装行为的研究 | 第26-36页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.2 实验部分 | 第26-29页 |
| 2.2.1 原料和试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第27页 |
| 2.2.3 原料的前处理 | 第27页 |
| 2.2.4 实验过程 | 第27-29页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第29-35页 |
| 2.3.1 羧甲基壳聚糖接枝聚己内酯(CMCS-g-PCL)的合成 | 第29-30页 |
| 2.3.2 羧甲基壳聚糖接枝聚己内酯(CMCS-g-PCL)的结构表征 | 第30-31页 |
| 2.3.3 空白CP胶束的制备及其结构形态的表征 | 第31-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第3章 羧甲基壳聚糖接枝聚己内酯载阿帕替尼胶束的制备及释药性能的研究 | 第36-51页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验部分 | 第36-39页 |
| 3.2.1 原料和试剂 | 第36-37页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第37页 |
| 3.2.3 原料的处理 | 第37页 |
| 3.2.4 实验过程 | 第37-39页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第39-49页 |
| 3.3.1 CPA胶束的不同制备方法的对比及载药胶束的表征 | 第39-44页 |
| 3.3.2 载药胶束的pH响应性研究 | 第44-46页 |
| 3.3.3 CPA胶束的体外释放实验 | 第46-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第4章 Apatinib/CMCS-g-PCL载药胶束的体外抗血管生成活性研究 | 第51-60页 |
| 4.1 引言 | 第51页 |
| 4.2 实验部分 | 第51-54页 |
| 4.2.1 原料和试剂 | 第51-52页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第52页 |
| 4.2.3 细胞培养 | 第52页 |
| 4.2.4 实验过程 | 第52-54页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第54-58页 |
| 4.3.1 空白胶束(CP micelles)的细胞毒性以及CPA胶束的溶血率 | 第54-55页 |
| 4.3.2 CPA载药胶束对HUVECs增殖的抑制作用 | 第55-56页 |
| 4.3.3 细胞迁移和小管成型实验 | 第56-57页 |
| 4.3.4 细胞摄取实验 | 第57-58页 |
| 4.4 本章小结 | 第58-60页 |
| 第5章 全文总结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第69页 |
