| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 符号说明 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-19页 |
| 研究现状、成果 | 第15-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-19页 |
| 一、乳鼠颅骨成骨细胞及人骨髓间充质干细胞的分离、培养 | 第19-33页 |
| 1.1 乳鼠颅骨成骨细胞的分离、培养 | 第19-26页 |
| 1.1.1 材料 | 第19页 |
| 1.1.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 1.1.1.2 实验药物与试剂 | 第19页 |
| 1.1.1.3 实验仪器 | 第19页 |
| 1.1.2 方法 | 第19-21页 |
| 1.1.2.1 新生乳鼠颅骨成骨细胞的分离及培养 | 第19-20页 |
| 1.1.2.2 成骨细胞的生物学特性 | 第20-21页 |
| 1.1.2.3 统计学处理 | 第21页 |
| 1.1.3 结果 | 第21-26页 |
| 1.1.3.1 细胞形态学观察 | 第21-23页 |
| 1.1.3.2 细胞的增殖 | 第23页 |
| 1.1.3.3 细胞钙化能力观察 | 第23-26页 |
| 1.1.3.4 细胞内ALP、BGP含量 | 第26页 |
| 1.2 人骨髓间充质干细胞的分离、培养 | 第26-33页 |
| 1.2.1 材料 | 第26页 |
| 1.2.1.1 标本来源 | 第26页 |
| 1.2.1.2 药物与试剂 | 第26页 |
| 1.2.1.3 实验仪器 | 第26页 |
| 1.2.2 方法 | 第26-28页 |
| 1.2.2.1 骨髓的采集 | 第26-27页 |
| 1.2.2.2 人骨髓间充质干细胞的分离培养 | 第27页 |
| 1.2.2.3 hBMSCs的生物学特性 | 第27-28页 |
| 1.2.2.4 统计学处理 | 第28页 |
| 1.2.3 结果 | 第28-31页 |
| 1.2.3.1 hBMSCs的细胞形态学 | 第28-29页 |
| 1.2.3.2 hBMSCs的增殖 | 第29-30页 |
| 1.2.3.3 hBMSCs表面抗原的表达 | 第30-31页 |
| 1.2.4 讨论 | 第31-33页 |
| 二、rhPTH_(1-34)促进骨折愈合分子机制的初步研究 | 第33-71页 |
| 1.1 PTH_(1-34)对成骨细胞增殖、分化及相关基因表达的影响 | 第33-43页 |
| 1.1.1 材料 | 第33页 |
| 1.1.1.1 动物 | 第33页 |
| 1.1.1.2 药物与试剂 | 第33页 |
| 1.1.1.3 实验仪器 | 第33页 |
| 1.1.2 方法 | 第33-37页 |
| 1.1.2.1 PTH_(1-34)对成骨细胞增殖的影响 | 第33-34页 |
| 1.1.2.2 PTH_(1-34)对成骨细胞分化功能的影响 | 第34页 |
| 1.1.2.3 PTH_(1-34)对成骨细胞增殖与分化相关基因mRNA表达的影响 | 第34-37页 |
| 1.1.2.4 统计学处理 | 第37页 |
| 1.1.3 结果 | 第37-43页 |
| 1.1.3.1 PTH_(1-34)对成骨细胞增殖的影响 | 第37-38页 |
| 1.1.3.2 PTH_(1-34)对成骨细胞分化的影响 | 第38-40页 |
| 1.1.3.3 PTH_(1-34)对成骨细胞相关基因表达的影响 | 第40-43页 |
| 1.2 PTH_(1-34)对hBMSCs向成骨细胞转化的影响 | 第43-50页 |
| 1.2.1 材料 | 第43页 |
| 1.2.1.1 标本来源 | 第43页 |
| 1.2.1.2 药物与试剂 | 第43页 |
| 1.2.1.3 实验仪器 | 第43页 |
| 1.2.2 方法 | 第43-45页 |
| 1.2.2.1 PTH_(1-34)对hBMSCs诱导转化过程中细胞增殖的影响 | 第43页 |
| 1.2.2.2 PTH_(1-34)对hBMSCs诱导成骨过程中细胞ALP活性和BGP含量的影响 | 第43-44页 |
| 1.2.2.3 PTH_(1-34)对hBMSCs诱导成骨过程中相关基因表达的影响 | 第44-45页 |
| 1.2.2.4 统计学处理 | 第45页 |
| 1.2.3 结果 | 第45-50页 |
| 1.2.3.1 PTH_(1-34)对hBMSCs转化为成骨细胞增殖的影响 | 第45页 |
| 1.2.3.2 PTH_(1-34)对hBMSCs诱导成骨过程中细胞ALP活性和BGP含量的影响 | 第45-46页 |
| 1.2.3.3 PTH_(1-34)对hBMSCs诱导成骨过程中相关基因表达的影响 | 第46-50页 |
| 1.3 PTH_(1-34)载药血清对成骨细胞增殖、分化的影响 | 第50-58页 |
| 1.3.1 材料 | 第50页 |
| 1.3.1.1 实验动物 | 第50页 |
| 1.3.1.2 药物与试剂 | 第50页 |
| 1.3.1.3 实验仪器 | 第50页 |
| 1.3.2 方法 | 第50-52页 |
| 1.3.2.1 PTH_(1-34)载药血清的制备 | 第50-51页 |
| 1.3.2.2 含PTH_(1-34)载药血清条件培养液的制备 | 第51页 |
| 1.3.2.3 含PTH_(1-34)载药血清对成骨细胞增殖的影响 | 第51页 |
| 1.3.2.4 含PTH_(1-34)载药血清对成骨细胞分化功能的影响 | 第51页 |
| 1.3.2.5 含PTH_(1-34)载药血清对成骨细胞增殖与分化相关基因mRNA表达的影响 | 第51-52页 |
| 1.3.2.6 统计学处理 | 第52页 |
| 1.3.3 结果 | 第52-58页 |
| 1.3.3.1 PTH_(1-34)载药血清对成骨细胞增殖的影响 | 第52-54页 |
| 1.3.3.2 PTH_(1-34)载药血清对成骨细胞分化的影响 | 第54-55页 |
| 1.3.3.3 PTH_(1-34)载药血清对成骨细胞相关基因表达的影响 | 第55-58页 |
| 1.4 PTH_(1-34)载药血清对hBMSCs向成骨细胞转化的影响 | 第58-67页 |
| 1.4.1 材料 | 第58页 |
| 1.4.1.1 标本来源 | 第58页 |
| 1.4.1.2 药物及试剂 | 第58页 |
| 1.4.1.3 实验仪器 | 第58页 |
| 1.4.2 方法 | 第58-60页 |
| 1.4.2.1 PTH_(1-34)载药血清的制备 | 第58-59页 |
| 1.4.2.2 PTH_(1-34)载药血清条件培养液的制备 | 第59页 |
| 1.4.2.3 PTH_(1-34)载药血清对hBMSCs诱导转化过程中细胞增殖的影响 | 第59页 |
| 1.4.2.4 PTH_(1-34)载药血清对hBMSCs诱导成骨过程中细胞ALP活性和BGP含量影响 | 第59-60页 |
| 1.4.2.5 PTH_(1-34)载药血清对hBMSCs诱导成骨过程中相关基因表达的影响 | 第60页 |
| 1.4.2.6 统计学处理 | 第60页 |
| 1.4.3 结果 | 第60-67页 |
| 1.4.3.1 PTH_(1-34)载药血清对hBMSCs诱导转化过程中细胞增殖的影响 | 第60-62页 |
| 1.4.3.2 PTH_(1-34)载药血清对hBMSCs诱导成骨过程中细胞ALP活性和BGP含量的影响 | 第62-64页 |
| 1.4.3.3 PTH_(1-34)载药血清对hBMSCs诱导成骨过程中细胞相关因子表达的影响 | 第64-67页 |
| 1.5 讨论 | 第67-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第74-75页 |
| 综述 甲状旁腺激素促进骨形成的研究进展 | 第75-86页 |
| 综述参考文献 | 第81-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
