| 第一部分 人参皂苷 Rb1 对神经干细胞分化的影响 | 第6-35页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 引言 | 第9-17页 |
| 1. 神经干细胞 | 第9-14页 |
| 2. 丙戊酸(valproic acid ,VPA) | 第14-15页 |
| 3. 人参皂甙 Rb1 | 第15-17页 |
| 材料和方法 | 第17-24页 |
| 1. 实验动物 | 第17页 |
| 2. 实验试剂 | 第17页 |
| 3. 试剂的配置 | 第17-19页 |
| 4. 实验器材 | 第19页 |
| 5. 神经干细胞的培养 | 第19-20页 |
| 6. 免疫荧光染色 | 第20-21页 |
| 7. 蛋白质免疫印迹 | 第21-24页 |
| 结果与分析 | 第24-33页 |
| 1. 选择性培养基促进神经球的形成，生长以及纯化 | 第24-26页 |
| 2. 神经干细胞的鉴定 | 第26-27页 |
| 3. 诱导神经干细胞分化的 VPA 最佳浓度 | 第27-28页 |
| 4. 诱导干细胞分化的最佳 Rb1 浓度 | 第28-30页 |
| 5. 最佳浓度的 Rb1 对神经元形态学指标的影响 | 第30-33页 |
| 讨论 | 第33-35页 |
| 第二部分 VPA 对神经损伤保护机制的研究 | 第35-45页 |
| 摘要 | 第36-37页 |
| Abstract | 第37-38页 |
| 引言 | 第38-39页 |
| 1. 丙戊酸的神经保护作用 | 第38页 |
| 2. RNF10 的功能 | 第38-39页 |
| 材料和方法 | 第39-42页 |
| 1. 实验动物 | 第39页 |
| 2. 引物 | 第39页 |
| 3. 实验试剂及器材 | 第39页 |
| 4. 大鼠臂丛神经撕脱伤模型的建立 | 第39-40页 |
| 5. 大鼠脊髓 RNA 的获得 | 第40页 |
| 6. 大鼠脊髓 cDNA 的获得 | 第40-41页 |
| 7. 通过 Real-time RT-PCR 检测 RNF10 的 mRNA 水平 | 第41-42页 |
| 结果与分析 | 第42-44页 |
| 1. 大鼠臂丛神经损伤模型的建立 | 第42页 |
| 2. VPA 促进 RNF10 的表达 | 第42-44页 |
| 讨论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
