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大鼠骨髓间充质干细胞培养及体外诱导向神经元样细胞分化的研究

摘要第4-5页
ABSTRACT第5-6页
目录第7-9页
符号说明第9-10页
1 前言第10-12页
2 BMSCs的分离培养及鉴定第12-23页
    2.1 实验材料与试剂第12-13页
        2.1.1 实验动物第12页
        2.1.2 主要实验仪器设备第12页
        2.1.3 主要试剂第12-13页
        2.1.4. 基本试剂的配制第13页
        2.1.5 实验器械第13页
    2.2 实验方法第13-16页
        2.2.1 技术路线第13-14页
        2.2.2 BMSCs的分离和培养第14-15页
        2.2.3 BMSCs表面标志物的鉴定第15-16页
    2.3 实验结果第16-20页
        2.3.1 不同培养时间BMSCs形态变化第16-19页
        2.3.2 BMSCs的流式细胞仪结果第19-20页
    2.4 讨论第20-23页
        2.4.1 鼠龄的选择第20-21页
        2.4.2 BMSCs的取材分离及纯化第21页
        2.4.3 BMSCs的培养第21-22页
        2.4.5 存在的问题第22-23页
3 BMSCs的体外诱导分化第23-34页
    3.1 材料与方法第23-24页
        3.1.1 主要仪器设备第23页
        3.1.2 主要试剂及耗材第23-24页
        3.1.3 主要试剂及培养液的配置第24页
    3.2 实验方法第24-25页
        3.2.1 技术路线第24页
        3.2.2 BMSCs诱导分化成神经样细胞第24-25页
        3.2.3 细胞免疫荧光鉴定第25页
        3.2.4 BMSCs诱导分化成神经样细胞分化率的比较第25页
    3.3 结果第25-29页
        3.3.1 细胞形态学变化第25-27页
        3.3.2 细胞免疫荧光鉴定结果第27-29页
        3.3.3 BMSCs诱导后NSE阳性表达率第29页
    3.4 讨论第29-34页
        3.4.1 BMSCs诱导分化成神经样细胞的诱导方法第29-30页
        3.4.2 BMSCs诱导分化成神经样细胞的诱导分化机制第30-32页
        3.4.3 BMSCs诱导分化成神经元细胞样细胞的检测第32-33页
        3.4.4 BMSCs诱导分化成神经样细胞的应用前景第33-34页
4 结论第34-35页
参考文献第35-43页
综述第43-52页
    参考文献第48-52页
攻读学位期间主要的研究成果第52-53页
致谢第53-54页

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