| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第一章 文献综述和立项依据 | 第10-23页 |
| 1 引言 | 第10-15页 |
| ·蓝藻简介 | 第10-11页 |
| ·藻胆体简介 | 第11-12页 |
| ·藻胆蛋白简介 | 第12-15页 |
| 2 藻蓝胆素的研究进展 | 第15-19页 |
| ·藻蓝胆素的结构 | 第15-16页 |
| ·藻蓝胆素的捕获和传递光能的作用 | 第16-17页 |
| ·影响藻蓝胆素光谱特性的因素 | 第17-18页 |
| ·藻蓝胆素的生物合成及重组 | 第18-19页 |
| 3 亚铁血红素氧化酶I与藻蓝胆素铁氧还蛋白还原酶的研究进展 | 第19-20页 |
| 4 实验目的及意义 | 第20-23页 |
| ·hox1基因和pcyA基因的克隆 | 第21页 |
| ·hox1基因和pcyA基因的序列分析 | 第21-22页 |
| ·表达载体的构建 | 第22-23页 |
| 第二章 hox1基因和pcyA基因的克隆和序列分析 | 第23-44页 |
| 1 材料与方法 | 第23-31页 |
| ·试验材料 | 第23-24页 |
| ·组织样品 | 第23页 |
| ·菌株与克隆载体 | 第23页 |
| ·DNA分析软件 | 第23页 |
| ·主要仪器设备 | 第23-24页 |
| ·药品和酶 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-31页 |
| ·聚球藻和钝顶节旋藻的培养 | 第24页 |
| ·改进的CTAB法提取微藻总DNA | 第24-25页 |
| ·PCR扩增 | 第25-28页 |
| ·PCR产物的克隆 | 第28-29页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备及质粒转化 | 第29页 |
| ·阳性克隆的筛选及鉴定 | 第29-30页 |
| ·测序 | 第30页 |
| ·序列分析和系统树的构建 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-41页 |
| ·总DNA的提取 | 第31页 |
| ·电泳检测PCR产物 | 第31-32页 |
| ·hox1基因和pcyA基因的测序结果 | 第32-33页 |
| ·开放阅读框分析 | 第33-34页 |
| ·GC含量分析 | 第34-35页 |
| ·氨基酸序列分析结果 | 第35-37页 |
| ·蛋白质二级结构分析 | 第37-38页 |
| ·hox1和pcyA基因的序列同源性分析 | 第38-40页 |
| ·分子系统树的构建 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-44页 |
| ·改良的CTAB法提取微藻的总DNA | 第41-42页 |
| ·降落PCR | 第42-44页 |
| 第三章 表达载体的构建 | 第44-70页 |
| 1 材料与方法 | 第44-61页 |
| ·材料 | 第44-45页 |
| ·菌株及表达载体 | 第44页 |
| ·试剂 | 第44-45页 |
| ·主要试剂及培养基的配制 | 第45页 |
| ·仪器设备 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-61页 |
| ·hox1基因及pcyA基因与启动子和终止子连接 | 第45-55页 |
| ·H片段与P片段和pUC18载体的连接 | 第55-59页 |
| ·表达载体的构建 | 第59-61页 |
| 2 结果与分析 | 第61-67页 |
| ·启动子和终止子的连接 | 第61-64页 |
| ·四个插入基因的双酶切结果 | 第61-62页 |
| ·PCR筛选鉴定转化子的结果 | 第62-63页 |
| ·双酶切鉴定转化子结果 | 第63-64页 |
| ·两片段与pUC18载体的连接 | 第64-66页 |
| ·线性载体的获得 | 第64-65页 |
| ·H片段和P片段的扩增 | 第65页 |
| ·融合实验检测结果 | 第65-66页 |
| ·表达载体的构建 | 第66-67页 |
| ·pSB130线性载体的获得 | 第66-67页 |
| ·转化子的鉴定 | 第67页 |
| 3 讨论 | 第67-70页 |
| ·In-Fusion~(TM)试剂盒的使用 | 第67-68页 |
| ·载体选择策略 | 第68页 |
| ·有关酶切体系 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76页 |
| 发表的学术论文 | 第76页 |