中英文缩略词对照 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
前言 | 第13-16页 |
1 实验材料 | 第16-20页 |
2 实验方法 | 第20-32页 |
2.1 T2DM小鼠模型的制备 | 第20页 |
2.2 动物分组及给药方法 | 第20-21页 |
2.3 病理学分析 | 第21-22页 |
2.4 免疫组织化学试验 | 第22-23页 |
2.5 HepG2细胞培养 | 第23-24页 |
2.6 HepG2胰岛素抵抗细胞模型的建立 | 第24-25页 |
2.7 MTT试验 | 第25页 |
2.8 葡萄糖消耗量的检测 | 第25-26页 |
2.9 免疫印迹试验 | 第26-31页 |
2.10 统计学处理 | 第31-32页 |
3 结果 | 第32-42页 |
3.1 丹参酮Ⅰ对STZ诱导的2型糖尿病小鼠空腹血糖的影响 | 第32-33页 |
3.2 丹参酮Ⅰ对STZ诱导的2型糖尿病小鼠体质量的影响 | 第33-34页 |
3.3 丹参酮Ⅰ对STZ诱导的2型糖尿病小鼠肝组织病理形态的影响 | 第34-35页 |
3.4 丹参酮Ⅰ对STZ诱导的2型糖尿病小鼠肝PTP1B量的表达的影响 | 第35-37页 |
3.5 丹参酮Ⅰ对STZ诱导的2型糖尿病肝组织Akt和P-Akt的影响 | 第37-38页 |
3.6 丹参酮Ⅰ对HepG2细胞增值的影响 | 第38-39页 |
3.7 丹参酮Ⅰ对HepG2胰岛素抵抗细胞的葡萄糖消耗量的影响 | 第39-40页 |
3.8 丹参酮Ⅰ对HepG2胰岛素抵抗细胞中PTP1B蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
3.9 丹参酮Ⅰ对HepG2胰岛素抵抗细胞中Akt和P-Akt蛋白表达的影响 | 第41-42页 |
4. 讨论 | 第42-44页 |
5. 结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-49页 |
附录 | 第49-50页 |
致谢 | 第50-51页 |
综述 | 第51-59页 |
参考文献 | 第57-59页 |