| 个人简历 | 第3-7页 |
| 本文主要英文缩略词索引 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 第一部分 黄精多糖促进骨髓来源的间充质干细胞向成骨细胞分化 | 第18-38页 |
| 1 材料和方法 | 第19-30页 |
| 1.1 材料 | 第19-22页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第19页 |
| 1.1.2 主要仪器设备 | 第19-20页 |
| 1.1.3 主要耗材 | 第20-21页 |
| 1.1.4 药物与主要试剂 | 第21-22页 |
| 1.1.5 主要试剂的配制 | 第22页 |
| 1.2 方法 | 第22-30页 |
| 1.2.1 小鼠间充质干细胞的培养 | 第23-24页 |
| 1.2.2 实验分组及细胞接种 | 第24-25页 |
| 1.2.3 MTT法测定黄精多糖对BMSCs细胞增殖的影响 | 第25页 |
| 1.2.4 碱性磷酸酶活性检测 | 第25-26页 |
| 1.2.5 茜素红染色检测矿化结节 | 第26页 |
| 1.2.6 实时荧光定量PCR检测成骨相关基因 | 第26-30页 |
| 1.2.7 统计学分析 | 第30页 |
| 2 结果 | 第30-35页 |
| 2.1 BMSCs细胞生长情况及形态学变化 | 第30-31页 |
| 2.2 黄精多糖对细胞增殖的影响 | 第31-32页 |
| 2.3 黄精多糖能显著提高BMSCs碱性磷酸酶活性 | 第32页 |
| 2.4 黄精多糖能明显增强BMSCs细胞外基质矿化 | 第32-34页 |
| 2.5 黄精多糖能明显促进BMSCs成骨分化相关基因的mRNA的表达 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| 4 小结 | 第37-38页 |
| 第二部分 黄精多糖通过Wnt/β-catenin信号通路调控BMSCs向成骨细胞分化 | 第38-56页 |
| 1 材料与方法 | 第38-48页 |
| 1.1 材料 | 第38-41页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第38-39页 |
| 1.1.2 主要仪器设备 | 第39页 |
| 1.1.3 主要耗材 | 第39页 |
| 1.1.4 主要试剂 | 第39-40页 |
| 1.1.5 主要试剂的配制 | 第40-41页 |
| 1.2 方法 | 第41-48页 |
| 1.2.1 qRT-PCR检测β-catenin基因的表达 | 第41页 |
| 1.2.2 Western Blot检测β-catenin蛋白的表达 | 第41-45页 |
| 1.2.3 免疫荧光染色鉴定β-catenin入核 | 第45-46页 |
| 1.2.4 双荧光素酶报告基因的检测 | 第46-48页 |
| 1.2.5 统计学分析 | 第48页 |
| 2 结果 | 第48-53页 |
| 2.1 黄精多糖上调BMSCs细胞总β-catenin和细胞核β-catenin的表达 | 第48-51页 |
| 2.2 黄精多糖能促进BMSCs β-catenin向细胞核内转移和定位 | 第51-52页 |
| 2.3 黄精多糖促进β-catenin/TCF/LEF转录活性 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-55页 |
| 4 小结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 文献综述：骨质疏松症药物治疗研究现状 | 第62-75页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第76页 |
