| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-20页 |
| 1.1 金属-有机骨架配合物(MOFs) | 第10-11页 |
| 1.2 NP@MOF复合材料的制备方法 | 第11-14页 |
| 1.2.1 浸渍法形成NP@MOF复合材料 | 第11-13页 |
| 1.2.2 外延生长法形成NP@MOF复合材料 | 第13-14页 |
| 1.2.3 其他方法 | 第14页 |
| 1.3 MOFs复合材料的应用 | 第14-17页 |
| 1.3.1 小分子吸收、储存和分离 | 第14-15页 |
| 1.3.2 催化反应 | 第15页 |
| 1.3.3 生物医学方面 | 第15-17页 |
| 1.3.4 电气方面 | 第17页 |
| 1.4 本论文研究的目的、意义及主要内容 | 第17-20页 |
| 1.4.1 研究目的及意义 | 第17-18页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第18-20页 |
| 第2章 尺寸选择性的QD@MOF核-壳纳米复合材料用于氧化酶活性的监控 | 第20-34页 |
| 2.1 前言 | 第20-21页 |
| 2.2 实验试剂和仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 试剂 | 第21页 |
| 2.2.2 实验设备及仪器 | 第21-22页 |
| 2.3 实验部分 | 第22-23页 |
| 2.3.1 CdTe QDs的制备 | 第22页 |
| 2.3.2 CdTe QD@PVP的制备 | 第22-23页 |
| 2.3.3 CdTe QD@ZIF-8 CSNCPs的制备 | 第23页 |
| 2.3.4 实验过程 | 第23页 |
| 2.4 实验结果及讨论 | 第23-32页 |
| 2.4.1 CdTe QD@ZIF-8 CSNCPs的表征 | 第23-25页 |
| 2.4.2 基于荧光的CdTe QD@ZIF-8 CSNCPs氧化酶活性的检测原理 | 第25-26页 |
| 2.4.3 实验条件的优化 | 第26-27页 |
| 2.4.4 灵敏度考察 | 第27-29页 |
| 2.4.5 选择性研究 | 第29页 |
| 2.4.6 实际样品检测 | 第29-30页 |
| 2.4.7 UOx和GOx活性检测 | 第30-32页 |
| 2.5 本章小结 | 第32-34页 |
| 第3章 制备溶菌酶介导的核壳NP@MOF纳米复合材料 | 第34-52页 |
| 3.1 前言 | 第34-35页 |
| 3.2 实验试剂和仪器 | 第35-37页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第35-36页 |
| 3.2.2 实验设备及仪器 | 第36-37页 |
| 3.3 实验步骤 | 第37-40页 |
| 3.3.1 纳米粒子的制备 | 第37-38页 |
| 3.3.2 NP@LYZ的制备 | 第38-39页 |
| 3.3.3 NP@LYZ@MOF的制备 | 第39页 |
| 3.3.4 催化研究及H_2O_2检测 | 第39页 |
| 3.3.5 制备CD@LYZ@Tb-MOFs阵列 | 第39-40页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第40-50页 |
| 3.4.1 NP@MOF的制备及表征 | 第40-44页 |
| 3.4.2 MNP@Tb-MOFs的催化应用 | 第44-48页 |
| 3.4.3 复合材料阵列的制备 | 第48-50页 |
| 3.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 总结 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-68页 |
| 致谢 | 第68-70页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第70页 |
