| 中文摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 第一章 正交试验设计优化消渴安糖方水提工艺的研究 | 第13-21页 |
| 1 实验材料 | 第13-14页 |
| 2 实验方法与结果 | 第14-19页 |
| 3 讨论 | 第19-21页 |
| 第二章 消渴安糖方对实验性糖尿病小鼠糖脂代谢的影响 | 第21-42页 |
| 1 实验材料 | 第21-23页 |
| 1.1 实验药品 | 第21页 |
| 1.2 实验动物 | 第21页 |
| 1.3 实验试剂 | 第21-22页 |
| 1.4 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2 实验方法 | 第23-29页 |
| 2.1 消渴安糖方的制备 | 第23页 |
| 2.2 糖尿病小鼠模型的建立 | 第23页 |
| 2.3 动物的分组与给药 | 第23页 |
| 2.4 糖耐量测定 | 第23-24页 |
| 2.5 血液样本、组织样本的制备 | 第24页 |
| 2.6 血清脂质含量的测定 | 第24页 |
| 2.7 肝脏中肝糖原含量的测定 | 第24-25页 |
| 2.8 RT-PCR检测肝脏中糖代谢相关基因mRNA的表达 | 第25-29页 |
| 2.9 统计方法 | 第29页 |
| 3 实验结果 | 第29-40页 |
| 3.1 消渴安糖方对糖尿病小鼠血糖的影响 | 第29-31页 |
| 3.2 消渴安糖方对糖尿病小鼠糖耐量的影响 | 第31-33页 |
| 3.3 消渴安糖方对糖尿病小鼠血清脂质含量的影响 | 第33-36页 |
| 3.4 肝脏中肝糖原含量的测定结果 | 第36-38页 |
| 3.5 消渴安糖方对糖尿病小鼠肝脏PEPCK、G6pc mRNA表达的影响 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 消渴安糖方对实验性糖尿病小鼠氧化应激水平的影响 | 第42-48页 |
| 1 实验材料 | 第42-43页 |
| 1.1 实验药品 | 第42页 |
| 1.2 实验动物 | 第42页 |
| 1.3 实验试剂 | 第42页 |
| 1.4 实验仪器 | 第42-43页 |
| 2 实验方法 | 第43-44页 |
| 2.1 消渴安糖方的制备 | 第43页 |
| 2.2 糖尿病小鼠模型的建立 | 第43页 |
| 2.3 动物的分组与给药 | 第43页 |
| 2.4 血液样本的制备 | 第43页 |
| 2.5 血清超氧化物歧化酶、丙二醛含量的测定 | 第43-44页 |
| 2.6 统计方法 | 第44页 |
| 3 实验结果 | 第44-46页 |
| 3.1 消渴安糖方对糖尿病小鼠氧化应激水平的影响 | 第44-46页 |
| 4 讨论 | 第46-48页 |
| 第四章 消渴安糖方对实验性糖尿病小鼠血清胰岛素及胰腺组织病理学形态的影响 | 第48-66页 |
| 1 实验材料 | 第48-50页 |
| 1.1 实验药品 | 第48页 |
| 1.2 实验动物 | 第48页 |
| 1.3 实验试剂 | 第48-49页 |
| 1.4 实验仪器 | 第49-50页 |
| 2 实验方法 | 第50-54页 |
| 2.1 消渴安糖方的制备 | 第50页 |
| 2.2 糖尿病小鼠模型的建立 | 第50页 |
| 2.3 动物的分组与给药 | 第50页 |
| 2.4 血液样本、组织样本的制备 | 第50页 |
| 2.5 血清胰岛素含量测定 | 第50-52页 |
| 2.6 胰腺组织HE染色 | 第52页 |
| 2.7 免疫组化法检测胰腺组织Bax、Bcl-2、Caspase-3 蛋白表达强度 | 第52-53页 |
| 2.8 统计方法 | 第53-54页 |
| 3 实验结果 | 第54-63页 |
| 3.1 消渴安糖方对糖尿病小鼠空腹胰岛素、胰岛素敏感指数、胰岛素抵抗指数的影响 | 第54-56页 |
| 3.2 小鼠胰腺组织HE染色结果 | 第56-58页 |
| 3.3 消渴安糖方对STZ所致2型型糖尿病小鼠胰腺组织Bax、Bcl-2、Caspase-3 蛋白表达的影响 | 第58-63页 |
| 4 讨论 | 第63-66页 |
| 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-73页 |
| 缩略词表 | 第73-74页 |
| 综述 | 第74-83页 |
| 参考文献 | 第79-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 个人简历及攻读学位期间获得的科研成果 | 第84页 |
