| 提要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 材料与方法 | 第12-22页 |
| 1.1 实验材料 | 第12-15页 |
| 1.1.1 实验动物与细胞 | 第12页 |
| 1.1.2 实验药物 | 第12页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第12-13页 |
| 1.1.4 实验仪器 | 第13-15页 |
| 1.2 实验试剂的配制 | 第15-16页 |
| 1.2.1 细胞培养试剂的配制 | 第15页 |
| 1.2.2 Western Blot试剂的配制 | 第15-16页 |
| 1.2.3 Human TGF-β1（规格为2ug）的稀释及后续处理 | 第16页 |
| 1.3 实验方法 | 第16-20页 |
| 1.3.1 HK-2细胞的培养、处理与分组 | 第16页 |
| 1.3.1.1 HK-2细胞的培养与处理 | 第16页 |
| 1.3.1.2 TGF-β1诱导EMT | 第16页 |
| 1.3.1.3 含药血清的制备 | 第16页 |
| 1.3.1.4 实验设计与分组 | 第16页 |
| 1.3.2 Trizol法提取总RNA | 第16-17页 |
| 1.3.3 实时定量RT-PCR检测miR-200a、miR-29c的表达 | 第17-18页 |
| 1.3.3.1 第一条cDNA链的合成 | 第17页 |
| 1.3.3.2 RT-PCR反应 | 第17-18页 |
| 1.3.4 Western Blot检测α-SMA、E-cadherin的表达 | 第18-20页 |
| 1.4 统计分析 | 第20-22页 |
| 结果 | 第22-26页 |
| 2.1 TGF-β1诱导HK-2细胞成功建立肾间质纤维化模型 | 第22页 |
| 2.1.1 细胞形态的改变 | 第22页 |
| 2.1.2 α-SMA、E-cadherin表达变化 | 第22页 |
| 2.2 细胞形态的改变 | 第22-23页 |
| 2.3 α-SMA、E-cadherin表达变化 | 第23-24页 |
| 2.4 miR-200a、miR-29c的表达变化 | 第24-26页 |
| 讨论 | 第26-36页 |
| 3.1 络病与肾间质纤维化 | 第26-28页 |
| 3.1.1 络病基础理论 | 第26页 |
| 3.1.2 关于肾间质纤维化机制 | 第26-27页 |
| 3.1.3 络病与肾间质纤维化 | 第27-28页 |
| 3.2 于俊生教授运用和法治疗肾间质纤维化经验 | 第28-29页 |
| 3.3 关于和络泄浊方 | 第29-32页 |
| 3.4 和络泄浊方对TGF-β1诱导的HK-2细胞miR-200a、miR-29c表达的影响 | 第32-36页 |
| 3.4.1 miR-200a、miR-29c与肾间质纤维化 | 第32-33页 |
| 3.4.2 TGF-β1诱导的HK-2细胞miR-200a、miR-29c的表达 | 第33-34页 |
| 3.4.3 和络泄浊方对TGF-β1诱导的HK-2细胞miR-200a、miR-29c表达的影响 | 第34-36页 |
| 结论 | 第36-38页 |
| 参考文献 | 第38-46页 |
| 综述 | 第46-54页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
| 附录 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
| 发表论文 | 第58-62页 |
