| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| ABSTRACT | 第11-15页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 文献回顾 | 第18-26页 |
| 1 材料 | 第26-32页 |
| 1.1 实验小鼠 | 第26页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第26-27页 |
| 1.3 主要试剂材料 | 第27-29页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第29-32页 |
| 1.5 主要PCR引物 | 第32页 |
| 1.6 其他材料 | 第32页 |
| 2 方法 | 第32-43页 |
| 2.1 小鼠模型构建 | 第32-33页 |
| 2.2 皮肤菌群对皮肤炎症反应的调控 | 第33页 |
| 2.3 LCs介导皮肤菌群对CHS的调控 | 第33-34页 |
| 2.4 组织HE切片制作 | 第34-35页 |
| 2.5 CD207质粒鉴定与扩增 | 第35-37页 |
| 2.6 过表达CD207质粒转染HEK293T细胞 | 第37页 |
| 2.7 荧光显微镜下检测过表达CD207质粒表达情况 | 第37页 |
| 2.8 western blot检测转染后HEK293T细胞中CD207的表达 | 第37-38页 |
| 2.9 过表达CD207质粒转染HEK293T细胞与表皮葡萄球菌结合 | 第38-39页 |
| 2.10 重组小鼠CD207蛋白对表皮葡萄球菌的结合 | 第39页 |
| 2.11 淋巴结单细胞悬液的制备及流式细胞术染色分析 | 第39-40页 |
| 2.12 表皮单细胞悬液制备及流式检测分泌IL-10 的差异 | 第40-41页 |
| 2.13 组织RNA的提取及实时定量PCR（qRT-PCR） | 第41-43页 |
| 2.14 数据分析 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-53页 |
| 3.1 皮肤菌群参与对皮肤炎症的调控 | 第43-44页 |
| 3.2 LCs缺失后皮肤菌群改变对CHS反应的作用 | 第44-45页 |
| 3.3 LCs组成性缺失CD207-DTA小鼠鉴定 | 第45页 |
| 3.4 小鼠CD207分子与表皮葡萄球菌结合 | 第45-49页 |
| 3.5 LCs在皮肤菌群改变后CHS模型中的反应 | 第49-52页 |
| 3.6 LCs对表皮屏障破坏皮肤炎症的影响 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-58页 |
| 小结 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 个人简历和研究成果 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
