| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩写、符号清单、术语表 | 第13-17页 |
| 1 引言 | 第17-20页 |
| 2 仪器与试剂 | 第20-26页 |
| 2.1 细胞株 | 第20页 |
| 2.2 实验动物 | 第20页 |
| 2.3 实验仪器及耗材 | 第20-21页 |
| 2.4 受试物与主要试剂 | 第21-26页 |
| 2.4.1 受试药物 | 第21页 |
| 2.4.2 试剂 | 第21-22页 |
| 2.4.3 药物和试剂的配制 | 第22-26页 |
| 3 实验方法 | 第26-36页 |
| 3.1 水菖蒲乙酸乙酯提取物(ACE)降糖药效研究的动物分组和处理 | 第26-27页 |
| 3.1.1 ACE对STZ诱导高血糖小鼠血糖的影响 | 第26页 |
| 3.1.2 ACE对db/db糖尿病小鼠血糖的影响 | 第26页 |
| 3.1.3 ACE对DIO小鼠血糖的影响 | 第26-27页 |
| 3.2 酶联免疫吸附法(ELISA)检测血浆胰岛素水平 | 第27-28页 |
| 3.3 组织免疫荧光法 | 第28页 |
| 3.4 组织病理学HE染色 | 第28-29页 |
| 3.5 ELISA检测血浆GLP-1水平 | 第29-30页 |
| 3.6 RT-PCR | 第30-31页 |
| 3.6.1 RNA提取 | 第30页 |
| 3.6.2 逆转录 | 第30页 |
| 3.6.3 实时荧光定量PCR(RT-PCR) | 第30-31页 |
| 3.7 细胞培养与处理 | 第31-32页 |
| 3.7.1 细胞培养 | 第31页 |
| 3.7.2 细胞处理 | 第31-32页 |
| 3.8 蛋白提取和浓度检测 | 第32页 |
| 3.9 Western blotting | 第32-33页 |
| 3.10 细胞免疫荧光 | 第33页 |
| 3.11 细胞内cAMP含量检测 | 第33-35页 |
| 3.12 核质分离 | 第35页 |
| 3.13 数据分析 | 第35-36页 |
| 4 实验结果 | 第36-55页 |
| 4.1 水菖蒲乙酸乙酯提取物(ACE)对糖尿病动物的体内降糖作用研究 | 第36-39页 |
| 4.1.1 ACE对STZ诱导高血糖小鼠的降糖作用 | 第36页 |
| 4.1.2 ACE对db/db糖尿病小鼠的降糖作用 | 第36-37页 |
| 4.1.3 ACE对DIO小鼠的降糖作用 | 第37-39页 |
| 4.2 水菖蒲乙酸乙酯提取物对糖尿病动物血浆胰岛素水平及胰岛组织的影响 | 第39-43页 |
| 4.2.1 ACE对STZ高血糖小鼠血浆胰岛素水平和胰岛组织的影响 | 第39-40页 |
| 4.2.2 ACE对db/db糖尿病小鼠血浆胰岛素水平和胰岛组织的影响 | 第40-42页 |
| 4.2.3 ACE对DIO小鼠血浆胰岛素水平和胰岛组织的影响 | 第42-43页 |
| 4.3 水菖蒲乙酸乙酯提取物对糖尿病动物GLP-1分泌和表达的影响 | 第43-48页 |
| 4.3.1 ACE对STZ高血糖小鼠GLP-1分泌和表达的影响 | 第43-44页 |
| 4.3.2 ACE对db/db糖尿病小鼠GLP-1分泌和表达的影响 | 第44-46页 |
| 4.3.3 ACE对DIO小鼠GLP-1分泌和表达的影响 | 第46-48页 |
| 4.4 水菖蒲乙酸乙酯提取物对肠道L细胞GLP-1合成与分泌的影响及其分子机制 | 第48-55页 |
| 4.4.1 ACE在基础状态下对肠道L细胞GLP-1表达与分泌的影响及其作用机制 | 第48-52页 |
| 4.4.2 ACE在病理状态下对肠道L细胞GLP-1表达与分泌的影响及分子机制 | 第52-55页 |
| 5 讨论 | 第55-61页 |
| 6 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 综述 | 第67-99页 |
| 参考文献 | 第85-99页 |
| 作者简历及在读期间所获得的科研成果 | 第99页 |
