| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 第1章 前言 | 第12-14页 |
| 第2章 实验材料 | 第14-19页 |
| 2.1 细胞系 | 第14页 |
| 2.2 实验动物 | 第14页 |
| 2.3 主要仪器和设备 | 第14-15页 |
| 2.4 主要试剂及配剂 | 第15-19页 |
| 2.4.1 主要试剂 | 第15-17页 |
| 2.4.2 主要试剂的配制 | 第17-19页 |
| 第3章 实验方法与步骤 | 第19-30页 |
| 3.1 人BM-MSCs的提取及培养 | 第19-21页 |
| 3.1.1 骨髓标本的采集 | 第19页 |
| 3.1.2 单个核细胞的获取 | 第19页 |
| 3.1.3 细胞将种植 | 第19页 |
| 3.1.4 细胞换液 | 第19页 |
| 3.1.5 细胞传代 | 第19-20页 |
| 3.1.6 细胞冻存 | 第20页 |
| 3.1.7 细胞复苏 | 第20-21页 |
| 3.2 K562细胞的培养 | 第21页 |
| 3.2.1 细胞换液 | 第21页 |
| 3.2.2 细胞传代 | 第21页 |
| 3.2.3 细胞冻存 | 第21页 |
| 3.2.4 细胞复苏 | 第21页 |
| 3.3 K562细胞生长曲线 | 第21页 |
| 3.4 检测细胞凋亡实验 | 第21-22页 |
| 3.5 检测细胞周期实验 | 第22-23页 |
| 3.6 裸鼠皮下瘤动物模型 | 第23-24页 |
| 3.6.1 细胞培养和处理 | 第23页 |
| 3.6.2 细胞皮下接种 | 第23-24页 |
| 3.6.3 实验动物饲养与观察 | 第24页 |
| 3.6.4 皮下瘤标本的制备 | 第24页 |
| 3.7 H-E染色 | 第24-25页 |
| 3.7.1 细胞H-E染色 | 第24-25页 |
| 3.7.2 病理切片H-E染色 | 第25页 |
| 3.8 TUNEL染色 | 第25-26页 |
| 3.9 免疫荧光 | 第26-27页 |
| 3.10 Western Blot | 第27-29页 |
| 3.10.1 组织蛋白的提取 | 第27页 |
| 3.10.2 SDS-PAGE胶的配制 | 第27-28页 |
| 3.10.3 蛋白样品上样 | 第28页 |
| 3.10.4 电泳 | 第28-29页 |
| 3.10.5 蛋白印迹 | 第29页 |
| 3.10.6 ECL化学发光及图像采集和分析 | 第29页 |
| 3.11 统计分析 | 第29-30页 |
| 第4章 实验结果 | 第30-45页 |
| 一、体外部分 | 第30-34页 |
| 4.1 原代BM-MSCs形态观察 | 第30-31页 |
| 4.2 BM-MSCs对K562细胞生长曲线的影响 | 第31页 |
| 4.3 流式细胞术检测BM-MSCs对K562细胞凋亡的影响 | 第31-32页 |
| 4.4 流式细胞术检测BM-MSCs对K562细胞细胞周期的影响 | 第32-34页 |
| 二、体内部分 | 第34-45页 |
| 4.5 BM-MSCs对裸鼠皮下瘤生长影响 | 第34-36页 |
| 4.6 BM-MSCs对裸鼠皮下瘤凋亡坏死的影响 | 第36-40页 |
| 4.7 BM-MSCs对裸鼠伊马替尼敏感性的影响 | 第40-41页 |
| 4.8 IL-7R/Jak/Stat5与BM-MSCs改变裸鼠皮下瘤对IM敏感性的过程相关 | 第41-45页 |
| 第5章 讨论 | 第45-50页 |
| 5.1 BM-MSCs抑制慢粒细胞增殖、凋亡 | 第47-48页 |
| 5.2 BM-MSCs降低慢粒细胞对IM的敏感性 | 第48-49页 |
| 5.3 BM-MSCs可能通过IL-7R/Jak/Stat5介导CML耐药 | 第49-50页 |
| 第6章 结论与展望 | 第50-51页 |
| 6.1 小结与结论 | 第50页 |
| 6.2 展望 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第57-58页 |
| 综述 外泌小体在白血病细胞和骨髓间充质干细胞交叉对话中的作用 | 第58-65页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
