| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-17页 |
| 1.1 植物启动子分类 | 第10-11页 |
| 1.2 启动子研究进展 | 第11-12页 |
| 1.2.1 组织或器官特异性启动子 | 第11页 |
| 1.2.2 诱导型启动子 | 第11-12页 |
| 1.2.3 组成型启动子 | 第12页 |
| 1.3 启动子的研究方法 | 第12-14页 |
| 1.3.1 启动子克隆的方法 | 第12-13页 |
| 1.3.2 启动子表达的方法 | 第13-14页 |
| 1.3.3 启动子缺失突变方法 | 第14页 |
| 1.4 杨树基因工程抗性研究的现状及展望 | 第14-16页 |
| 1.4.1 杨树基因工程抗性研究的现状 | 第14-15页 |
| 1.4.2 杨树基因工程抗虫研究的发展前景 | 第15-16页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第16-17页 |
| 2 启动子木质部组织特异性活性研究 | 第17-22页 |
| 2.1 材料 | 第17页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第17页 |
| 2.1.2 试剂 | 第17页 |
| 2.2 试验方法 | 第17-18页 |
| 2.2.1 菌液的制备 | 第17页 |
| 2.2.2 杨树的转化 | 第17页 |
| 2.2.3 转基因杨树GUS报告基因的检测 | 第17-18页 |
| 2.3 结果与分析 | 第18-22页 |
| 2.3.1 转基因杨树GUS报告基因的分子检测 | 第18-19页 |
| 2.3.2 转基因杨树的GUS活性定性检测 | 第19-20页 |
| 2.3.3 转基因杨树的GUS活性定量检测 | 第20-22页 |
| 3 启动子诱导活性研究 | 第22-39页 |
| 3.1 转基因毛白杨的诱导处理 | 第22-30页 |
| 3.1.1 材料 | 第22页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第22-23页 |
| 3.1.3 结果与分析 | 第23-30页 |
| 3.2 转基因烟草的诱导处理 | 第30-39页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第30页 |
| 3.2.2 试验方法 | 第30-31页 |
| 3.2.3 结果与分析 | 第31-39页 |
| 4 加杨木质部特异启动子缺失片段的克隆 | 第39-42页 |
| 4.1 材料 | 第39页 |
| 4.1.1 材料和试剂 | 第39页 |
| 4.1.2 培养基及抗生素 | 第39页 |
| 4.2 试验方法 | 第39-40页 |
| 4.2.1 JCesAP启动子 5’系列缺失片段的获得 | 第39-40页 |
| 4.2.2 植物表达载体的构建 | 第40页 |
| 4.3 结果与分析 | 第40-42页 |
| 4.3.1 不同长度 5’端缺失启动子及全长启动子的克隆 | 第40页 |
| 4.3.2 JCesAP启动子重组表达载体的鉴定 | 第40-41页 |
| 4.3.3 重组质粒转化根癌农杆菌的PCR检测 | 第41-42页 |
| 5 加杨木质部特异启动子缺失序列的功能分析 | 第42-47页 |
| 5.1 材料 | 第42页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第42页 |
| 5.1.2 培养基 | 第42页 |
| 5.2 试验方法 | 第42-43页 |
| 5.2.1 烟草瞬时表达 | 第42页 |
| 5.2.2 农杆菌介导的叶盘法转化烟草 | 第42页 |
| 5.2.3 转基因烟草的PCR检测 | 第42-43页 |
| 5.2.4 GUS基因表达的组织化学染色 | 第43页 |
| 5.3 结果与分析 | 第43-47页 |
| 5.3.1 转基因烟草的瞬时检测 | 第43-44页 |
| 5.3.2 转基因烟草植株的获得 | 第44-45页 |
| 5.3.3 转基因烟草的PCR检测 | 第45-46页 |
| 5.3.4 转基因烟草的GUS基因表达的组织化学染色 | 第46-47页 |
| 6 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 在读期间已发表论文 | 第52-53页 |
| 作者简介 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
