| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 一、引言 | 第11-12页 |
| 二、材料与方法 | 第12-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第12-16页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第12页 |
| 2.1.2 实验仪器和试剂 | 第12-15页 |
| 2.1.3 主要溶液的制备 | 第15-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-28页 |
| 2.2.1 实验动物分组 | 第16-17页 |
| 2.2.2 大鼠颅内VH模型的建立 | 第17页 |
| 2.2.3 原代小鼠脑微血管内皮细胞分离与培养 | 第17-18页 |
| 2.2.4 细胞免疫荧光鉴定 | 第18-19页 |
| 2.2.5 药物处理 | 第19-20页 |
| 2.2.6 基因转染 | 第20页 |
| 2.2.7 免疫组化染色 | 第20-21页 |
| 2.2.8 Western Blot检测 | 第21-25页 |
| 2.2.9 荧光实时定量PCR(q-RT PCR) | 第25-26页 |
| 2.2.10 Transwell细胞迁移实验 | 第26-27页 |
| 2.2.11 脉管形成实验 | 第27-28页 |
| 2.2.12 统计学处理 | 第28页 |
| 三、实验结果 | 第28-38页 |
| 3.1 颅内VH显著上调脑内Nrf2表达水平 | 第28-29页 |
| 3.2 颅内VH显著激活Nrf2-ARE及HIF-1α/VEGF信号通路 | 第29页 |
| 3.3 敲除Nrf2抑制VH诱导的Nrf2-ARE及HIF-1α/VEGF信号通路的激活 | 第29-31页 |
| 3.4 鉴定原代培养的小鼠脑微血管内皮细胞 | 第31页 |
| 3.5 VEGF通过ERK1/2显著激活Nrf2-ARE信号通路 | 第31-34页 |
| 3.6 Nrf2通过Nrf2/HO-1/HIF-1α通路上调VEGF表达水平 | 第34-37页 |
| 3.7 Nrf2缺失抑制VEGF_(165)诱导的BMECs迁移及脉管形成 | 第37-38页 |
| 四、讨论 | 第38-42页 |
| 全文小结 | 第42-43页 |
| 文献综述 | 第43-53页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 硕士期间撰写及发表的论文及研究成果 | 第53-55页 |
| 致谢 | 第55-57页 |
